酵母基因组DNA提取试剂盒 返回列表页

酵母基因组DNA提取试剂盒产品货号：26230产品规格：50T/100T产品简介：本试剂盒采用可以特异性结合DNA的离心吸附柱和*的缓冲液系统，提取酵母基因组DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司*新型材料，能够高效专一吸附DNA，可最大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。提取的基因组DNA片段大，纯度高，质量稳定可靠。使用本试剂盒提取的基因组DNA可用于各种常规操作，包括酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等实验。产品组成：试剂盒内容 50T 100T 保存条件RNaseA 1ml 1ml×2 -20℃蛋白酶K 1ml 1ml×2 -20℃酵母破壁酶 1.25ml 1.25ml×2 -20℃巯基还原剂 300μL 600μL -20℃山梨醇Buffer 25ml 50ml 室温溶液A 10ml 20ml 室温溶液B 10ml 20ml 室温漂洗液 15ml 30ml 室温洗脱液 15ml 30ml 室温吸附柱 50个 100个 室温收集管 50个 100个 室温操作步骤 (仅供参考) ：使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶体上的标签。所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。1. 取酵母细胞不超过5×107 cell s)，12000rpm离心1min，尽量吸除上清。2. 酵母细胞壁的破除：向酵母菌体中加入470ul山梨醇Buffer。充分悬浮菌体，加入25ul酵母破壁酶和5ul巯基还原剂，充分混匀。30℃处理 2h，期间可颠倒离心管混匀数次。3. 12000rpm离心lmin，弃上清，收集沉淀。4. 向沉淀中加入200ul溶液 ，充分悬浮沉淀，向悬浮液中加入20ul的RNase A(10mg/ml)，充分颠倒混匀，室温放置 10min。5. 加入20ul的蛋白酶K(10mg/ml)，充分颠倒混匀。65℃水浴消化15-30min，消化期间可颠倒离心管混匀数次，直至样品消化*为止。6. 加入200ul溶液，再加入200ul无水乙醇，充分颠倒混匀，此时可能会出现絮状沉淀，不影响DNA的提取，可将溶液和絮状沉淀都加入吸附柱中，室温放置2min。7. 12000rpm离心2min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。8. 向吸附柱中加入600ul漂洗液（使用前请先检查是否己加入无水乙醇）。12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。9. 向吸附柱中加入600ul漂洗液，12000rpm离心1min， 弃废液，将吸附柱放入收集管中。10. 12000rpm离心2min，将吸附柱敞口置于室温或50℃温箱放置数分钟，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，否则漂洗液中的乙醇会影响后续实验如酶切、PCR等。11. 将吸附柱放入一个干净的离心管中，向吸附膜中央悬空滴加50-200ul经65℃水浴预热的洗脱液，室温放置5min， 12000rpm离心1min。12. 离心所得洗脱液再加入吸附柱中，12000rpm离心2min，即可得到高质量的基因组DNA。注意事项：1. 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段较小且提取量下降。2. 若试剂盒中的溶液出现沉淀，可在 65℃水浴中重新溶解后再使用，不影响提取效果。3. 如果实验中的离心步骤出现柱子堵塞的情况，可适当延长离心时间。4. 洗脱缓冲液的体积最好不少于 50ul，体积过小会影响回收效率；洗脱液的 pH 值对洗脱效率也有影响，若需要用水做洗脱液应保证其 pH 值在 8.0 左右可用 NaOH 将水的 pH 值调至此范围，pH 值低于 7. 0 会降低洗脱效率。 DNA 产物应保存在-20℃，以防 DNA 降解。5. DNA 浓度及纯度检测：得到的基因组 DNA 片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。回收得到的 DNA 片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。DNA 应在 OD260处有显著吸收峰，OD260值为 1.0 相当于大约 50μg/ml 双链 DNA、40μg/ml 单链 DNA。OD260/0D280比值应为 1.7-1.9，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用去离子水，比值会偏低，因为 pH 值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。有效期：室温干燥保存，复检期 12 个月，2~8℃保存时间更长。