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上海北诺生物科技有限公司
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经验分享：1.原代细胞铺満瓶底后弃原液，PBS冲洗2次。2.加入0.25%Trypsin-0.02%EDTA,量覆盖瓶底即可，室温作用，镜下观察至组织块周围的细胞回缩，立体感增强。3.弃去消化液，PBS轻漂一遍(目的是除去EDTA，它对脆弱的原代细胞很不好)但不要用力摇晃，以免部分消化稍过的细胞流失。4.加入培养液吹打，不要产生气泡，对细胞有损。5.吸出2/3的悬液传入新瓶。6.向原瓶中余下的1/3细胞悬液中补加2/3的新培养液，与未消化的组织块继续培养。7.24小时内新的细胞又从组织块中爬出啦
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三、实验结果计算1.一只小鼠可获得（1～2.5）×108个脾细胞。2.细胞接种后一般几小时内就能贴壁，并开始生长，如接种的细胞密度适宜，5天到一周即可形成单层。3.一般情况，传代后的细胞在2小时左右就能附着在培养瓶壁上，2～4天就可在瓶内形成单层，需要再次进行传代。四、注意事项1.取材要求新鲜，无菌，解剖小鼠时，注意不要损伤脾脏及其周围的脏器，尤其是肠道等，防止污染脾脏。2.冲洗脾脏时要尽量洗净血污，去除无用组织，并要防止组织干燥。3.碾磨后及时用清水冲洗筛网，防止组织、细胞阻塞网孔。4.计数前
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一、实验原理细胞培养可分为原代培养和传代培养。直接从体内获取的组织细胞进行培养为原代培养；当原代培养的细胞增殖达到一定密度后，则需要做再培养，即将培养的细胞分散后，从一个容器以1：2或其他比率转移到另一个或几个容器中扩大培养，为传代培养，传代培养的累积次数就是细胞的代数。细胞冻存及复苏的基本原则是慢冻快融，实验证明这样可以zui大限度的保存细胞活力。目前细胞冻存多采用甘油或DMSO作保护剂，这两种物质能提高细胞膜对水的通透性，加上缓慢冷冻可使细胞内的水分渗出细胞外，减少细胞内冰晶的形成，从而减少
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1.如果扩增曲线ct值比较靠后的话，32左右，一般有什么方法解决没有ct值比较靠后，对实验有一定的影响，因为经过那么多次的循环，酶的活性有可能有所下降，这时候扩增效率会有所改变（而定量PCR的理论基础就是每次循环的扩增效率我们认为是确定的一个值）。因此能够把ct值往前移。解决办法可以将模板加以浓缩或者抽干之后用少量水去溶解。2.为什么合成的引物做不加摸板的对照也能扩增出目的条带，而内参用同样体系就没有呢?引物被污染。3.实时定量PCR，荧光定量PCR，实时荧光定量PCR，real－timePCR
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1样品RNA的抽提①取冻存已裂解的细胞，室温放置5分钟使其*溶解。②两相分离每1ml的TRIZOL试剂裂解的样品中加入0.2ml的仿，盖紧管盖。手动剧烈振荡管体15秒后，15到30℃孵育2到3分钟。4℃下12000rpm离心15分钟。离心后混合液体将分为下层的红色酚仿相，中间层以及无色水相上层。RNA全部被分配于水相中。水相上层的体积大约是匀浆时加入的TRIZOL试剂的60%。③RNA沉淀将水相上层转移到一干净无RNA酶的离心管中。加等体积异丙醇混合以沉淀其中的RNA，混匀后15到30℃孵育10
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实验原理在细胞核中，DNA是环状附着在核基质上，细胞裂解过程中，核基质被溶解、抽提，DNA的结构则未发生变化。如果DNA链上存在缺口，则使DNA超螺旋变的松弛，DNA环向外展，同时由于暴露了阴电荷，在电场力的作用下，松动的DNA环向阳极迁移，但是由于这种松动的DNA环一端仍附着于核DNA，其迁移距离受到限制，因此尾长并不总是真实反映链缺口的多少。实际应当依靠尾长与尾部的荧光强度同时来进行分析。实验步骤1.分离制备单细胞悬液：1)体外培养的细胞株：用胰酶消化，吹打成单细胞悬液；2)体内脏器细胞：处
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实验原理免疫电泳又称为γ球蛋白电泳或免疫球蛋白电泳技术，这是一种能够判断血液中三种免疫球蛋白IgM,IgG,IgA含量水平的实验方法。在这项实验技术中，首先利用蛋白质的分子量和所带电荷的比值运用水平琼脂糖凝胶电泳技术将蛋白质进行分离，然后将特异性的抗体引入到与电泳方向平行的凹槽中，在抗原和抗体的扩散过程中，抗原和抗体适当比例的结合会导致沉淀的产生。0.85%盐不仅可以终止扩散过程也可用于洗去未结合的蛋白，抗原和抗体结合所形成的沉淀线即可以肉眼观察也可利用染色方法观察。免疫电泳技术不仅可用于血清或
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实验原理生物大分子如蛋白质、核酸、多糖等常以颗粒分散在溶液中．它们的净电荷取决于介质的H浓度或与其他大分子的相互作用。在电场中，带电颗粒向阴极或阳极迁移．迁移的方向取决于它们带电的符号．这种迁移现象即谓电泳。迁移的方式目前可以根据分子尺寸大小、分子所带的电荷或分子的生物学与化学特性分为三类。如果把生物大分子的胶体溶液放在一个没有干扰的电场中，使颗粒具有一定迁移速率的驱动力来自于颗粒的有效电荷Q和电位梯度E。它们与介质的摩擦阻力f抗衡：在自由溶液中，这种抗衡服从斯托克斯定律。f=6πrvη这里v是
