SuperTOPO-Amp平末端克隆试剂盒

SuperTOPO-Amp平末端克隆试剂盒是基于 Topoisomerase 能够在几秒钟之内高速连接 DNA 片段的
原理开发的无背景克隆试剂盒，它使用了本公司通过定点突变改良的 TOPO酶，连接效率比野生型更高。

SuperTOPO-Amp平末端克隆试剂盒具有下列特点：
1. 高效快速，连接反应几乎在几秒钟内完成，连接率几乎达到 100%。
2. 适用于具有 A 尾巴的 DNA 片段使用。
3. 无杂带或引物二聚体的 PCR 扩增产物可以不经过纯化直接用于连接反应。
4. 转化时只需要 37℃10 分钟复苏即可涂盘，免去冰浴、热休克和复苏步骤。
5. 零背景，无需 IPTG-X-Gal 蓝白斑筛选，故不需要 IPTG-X-Gal 培养基。
6. 本试剂盒按 10 uL 标准反应体系，有 25 次和 50 次两种规格包装供选择。
7. 提供含 Amp 和 Kan 两种抗性的载体供选择（160686-25A/50A 是含
Amp 抗性 TOPO 载体，160686-25K/50K 是含 Kan 抗性 TOPO 载体）。
规格及成分 成 份 编 号 25 次热封袋
包装
50 次热封袋
包装
SuperTOPO-Amp 载体 160686-A 25 uL（其一） 50 uL（其一）
SuperTOPO-Kan 载体 160686-K 25 uL（其一） 50 uL（其一）
连接缓冲液 160686B 25 uL 50 uL
超纯水 100935 1 mL 1 mL
使用手册 1 份
注意：160686-25A/50A 提供 SuperTOPO-Amp 载体，160686-25K/50K
提供 SuperTOPO-Kan 载体。
运输及保存 低温运输，-20℃保存，有效期一年。
自备试剂 DNA 插入片段、感受态细胞、SOC 或 LB 培养基和培养皿（含抗菌素和不含
的）
使用方法 1. PCR 扩增或酶切回收 DNA 插入片段。如果是 PCR 制备插入片段，所用
引物不能磷酸化，使用 Taq 系列的 DNA 聚合酶。
2. 电泳检测并相对定量 PCR 片段或酶切回收片段（跟 DNA marker 比较）。
并根据插入片段长度和下表确定每次连接反应需要的*用量：
插入片段长度 *用量
100-1000 bp 20-50 ng
1000-2000 bp 50-100 ng
2000-5000 bp 100-200 ng
3. 在一个干净的塑料离心管中，室温下（不要放在冰上）设置如下连接反应
体系：
成 份 用 量
纯化后的 PCR 产物 不超过 8 uL（详见注意事项）
SuperTOPO-Amp 载体或
SuperTOPO-Kan 载体
1 uL
连接缓冲液 1 uL
超纯水 补到 10uL
注意：如果使用未经纯化的 PCR 产物，则需要加入量不能超过 1 uL，否
则 PCR 体系会干扰连接体系。
4. 轻柔吹打混匀后，短暂离心，常温（20-30℃）放置 0-5 分钟。如果在冬
天室温低于 20℃，建议使用 25℃水浴或金属浴。注意：连接时间超过 5
分钟的话连接效率会降低。
5. 如果当天不转化，可以将离心管放-20℃保存。如果转化，则取 5 uL 连
接液加到 50-100 uL 刚刚融化的感受态细胞中，轻柔混匀。注意：本产
品要求感受态细胞的转化效率不得低于 5﹡10E7cfu/ug。
6. 如果片段长度小于 2 Kb，则不需要冰浴和热激，直接在离心管中加入 500
uL 不含抗菌素的 SOC 或 LB 培养基，然后取 200 uL 涂盘。也可以先
3000g 离心 2 分钟后，弃掉大部分上清，只留约 100 uL 左右，然后重
悬细菌后全部涂盘在含 Amp（对 SuperTOPO-Amp）或 Kan（对
SuperTOPO-Kan）的培养皿上，37℃过夜培养。
7. 如果片段长度长于 2 Kb，则按常规转化方式，先冰浴 2-30 分钟，然后
42℃热激 30 秒，冰上防放置 2 分钟，再在离心管中加入 500 uL 不含
抗菌素的 SOC 或 LB 培养基，37℃ 250 rpm 培养 60 分钟，然后取 200
uL 涂盘。也可以先 3000g 离心 2 分钟后，弃掉大部分上清，只留约 100
uL 左右，然后重悬细菌后全部涂盘在含 Amp（对 SuperTOPO-Amp）
或 Kan（对 SuperTOPO-Kan）的培养皿上，37℃过夜培养。
8. 用菌落 PCR、直接测序或其他方法鉴定重组子。
关联产品 SuperTOPO 通用克隆试剂盒、SuperTOPO Blunt 克隆试剂盒