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目录:上海拜澳迪思生物技术有限公司>>生物试剂>>蛋白生物学>> Ni-NTA 镍柱

Ni-NTA 镍柱
  • Ni-NTA 镍柱
参考价860
具体成交价以合同协议为准

参考价:¥ 860

具体成交价以合同协议为准
  • BIODIS 品牌
  • 型号
  • 经销商 厂商性质
  • 上海市 所在地
规格

10ml/瓶

属性

供货周期:现货 规格:mL 应用领域:医疗卫生,生物产业,制药,综合 主要用途:仅供科研使用

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规格
10ml/瓶860元16瓶可售

更新时间:2023-04-01 13:50:36浏览次数:1368评价

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供货周期 现货 规格 mL
应用领域 医疗卫生,生物产业,制药,综合 主要用途 仅供科研使用
Ni-NTA 镍柱以高度交联的 6% 琼脂糖凝胶为基质,可实现高产量,高纯度的 His 标记蛋白的纯化。

Ni-NTA 镍柱简介

Ni-NTA His-Tag 纯化琼脂糖由次氮基三乙酸 (NTA) 螯合剂激活的琼脂糖珠组成,随后加入二价镍 (Ni2+)由四个配位点组成。

亲和层析纯化试剂具有低Ni2+渗漏、高蛋白结合能力和稳定性,并与多种化学品和 pH 值兼容,使其成为高效纯化大肠杆菌、酵母、昆虫和哺乳动物表达系统中表达的聚组*酸标记蛋白的理想选择。


Ni-NTA 镍柱使用方法

1. 样品处理:

细菌或酵母表达的蛋白 

(1) 挑取单菌落到培养基,根据载体使用说明加入相应浓度的诱导剂诱导相应的时间。 

(2) 表达结束后,收集菌液至离心管中,7000 rpm,离心 15 分钟,弃上清,收集菌体沉淀。随后加入 1/10 体积的 Lysis Buffer 和蛋白酶抑制剂。加入溶*酶 (工作液浓度为 0.2-0.4 mg/mL;如果表达的宿主细胞内含 pLysS 或 pLysE,可以不加溶*酶),需确认加入的蛋白酶抑制剂不会影响目的蛋白与 Agarose的结合。

(3) 将菌体沉淀重悬混匀 (如果菌液浓度高,也可选择加入 10 μg/mL RNase A 和 5 μg/mL DNase I),放置在冰上,然后冰上超声破碎细胞,至菌液基本保持澄清。 

(4) 将澄清的破碎液转移至离心管中,10000 rpm,4℃ 离心 20-30 分钟。取上清,置于冰上备用或 -20℃ 保存。 

酵母、昆虫和哺乳动物分泌表达可溶性蛋白 

(1) 将细胞培养液收集至离心管中,5000 rpm,离心 10 分钟,取上清,弃沉淀,如上清中不含 EDTA、组*酸和还原剂等物质,可直接加入柱子进行后续操作;如含有 EDTA、组*酸和还原剂等物质,需用 1×PBS 在 4℃ 条件下经透析后才能加入柱子。 

(2) 对于大量体积的上清,需加入硫酸铵沉淀浓缩后,用 1×PBS 在 4℃ 条件下经透析后才能加入柱子。 

包涵体蛋白 (变性条件) 

(1) 将培养液收集至离心管中,7000 rpm,离心 15 分钟,弃上清,收集菌体沉淀。

(2) 按照菌体: Lysis Buffer=1:10 (W/V) 的比例将菌体重悬混匀,冰浴超声破碎。 

(3) 将破碎液转移至离心管中,10000 rpm,4℃ 离心 20-30 分钟。弃上清,重复步骤 (2) 和步骤 (3) 一次。 

(4) 按照菌体: Lysis Buffer (含 8 M 尿素)=1:10 (W/V) 的比例将包涵体悬浮起来。 

(5) 变性条件下进行His标签重组蛋白纯化操作。 

2. Ni-NTA His-Tag Purification Agarose 的装填:

(1) 用去离子水冲洗柱底筛板,确保柱底筛板上无气泡,关闭柱底出口,并在柱底部留出 1-2 cm 的去离子水。 

(2) 将 Agarose 悬浮混匀,小心地将浆液连续地倒入柱管中。用玻璃棒沿着柱壁倒入浆液可减少气泡的产生。 

(3) 打开柱底部出口,最初让缓冲液缓慢流过层析柱,然后缓慢增加至最终流速,这样可避免液压对所形成柱床的冲击,得到很好的装填效果。当柱床高度稳定后,在最后的装柱流速下至少再上 3 倍柱体积的去离子水。标记柱床高度。 

(4) 关闭柱底部出口。 

3. 样品纯化: 

(1) 平衡:使用至少 5 倍柱体积的 Lysis Buffer 平衡层析柱。 

(2) 上样:利用泵或注射器上样。为了避免堵塞层析柱,样品应经离心或使用滤膜 (0.22 μm 或 0.45 μm)过滤。 

(3) 洗杂:用 Wash Buffer 冲洗柱子,直到紫外吸收达到一个稳定的基线 (一般至少 10-15 倍柱体积),收集流出组分和洗杂部分。

 注:在平衡缓冲液加入低浓度咪唑可以提高样品纯度。 

(4) 洗脱:用 Elution Buffer 采用一步法或线性梯度洗脱。一步洗脱中,通常 5 倍柱体积洗脱液就足够了;线性梯度洗脱可以用一个小的梯度,例如 20 倍柱体积或更多,来分离不同结合强度的蛋白质。 

(5) SDS-PAGE 检测:将纯化得到的样品 (包括流出组分、洗杂部分和洗脱部分)以及原始样品使用 SDS-PAGE 检测纯化效果。 

4. 在位清洗 (Cleaning-in Place, CIP): 

(1) 去除强疏水结合的蛋白,脂蛋白和脂类:使用 5-10 倍柱体积的 30% 异丙醇清洗,接触时间为 15-20 分钟可以去除此类污染物,然后再使用 10 倍柱体积的去离子水清洗。也可以选择使用含有去污剂的酸性或碱性溶液清洗 2 倍柱体积。去污剂处理后,需要使用 5 倍柱体积的 70% 乙醇清洗,以去除去污剂。最后使用 10 倍柱体积的去离子水清洗。 

(2) 去除离子作用结合的蛋白:使用 1.5 M NaCl 溶液清洗,接触时间为 10-15 分钟,然后再使用 10 倍柱体积的去离子水清洗。 

5. 填料再生:当 His 标签重组蛋白纯化填料使用过程中发现颜色变浅,或者填料载量明显变低时,需要对填料进行镍离子剥离和镍离子重挂,也就是填料再生。


注意事项及储存

1.储存在2-8ºC,并稳定至少2年。

2.不要干燥或冷冻琼脂糖珠。













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