富士胶片和光（广州）贸易有限公司是日本富士胶片和光纯药株式会社（FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation）在中国的子公司，主营富士胶片和光品牌试剂产品，供应产品超50,000种，囊括了生命科学、药品生产、品质管理领域、合成与材料、分析各个领域。
基于“想要为科研人员提供帮助”的创业初衷，富士胶片和光纯药（FUJIFILM Wako）作为一家满足前沿研究领域需求的综合试剂制造商，一直致力于生产和开发高品质的产品，并于2022年6月迎来了创业100周年。通过发挥企业优势“技术力”，以及三大核心业务的试剂业务、化成品业务和临床诊断业务来满足学术界、企业以及医疗相关企业的广泛需求。
凭借100 年的历史经验，富士胶片和光纯药（FUJIFILM Wako）在日本市场占据高份额，作为全球性的试剂供应商，以“成就科学未来之力，创造幸福源泉”为愿景，致力于高品质试剂的生产与开发。通过提供试剂，为再生医疗、癌症、精神/神经疾病和抗体药物等各类基础研究和前沿研究做贡献，并获得 ISO9001等多项国际认证。基于可靠的技术和品质、以及科研人员之间的信赖，作为富士胶片集团的一员将不断实现全球化发展。
主要业务——试剂
作为富士胶片和光纯药（FUJIFILM Wako）试剂业务的中国子公司，富士胶片和光（广州）贸易有限公司可提供各个领域测试和研究用途的生命科学试剂和化学试剂。
试剂业务 | ||||||
可广泛提供生命科学和化学领域的测试研究用产品 | ||||||
生命科学领域 | 化学领域 | |||||
● 培养基生产 ● 抗体制备 ● 定制服务 |
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● 认证标准品 ● 有机化学 |
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作为优质的试剂企业，我们可以提供满足不同客户需求的高品质产品。试剂业务自创业以来，已持续不断地提供了广泛领域的试剂产品，并致力于成为满足前沿技术领域各项研究需求的试剂制造商。今后也将以过往技术经验为基石，发挥作为可信赖的研究支持合作伙伴的作用。
产品一览
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● 常规试剂 ● 有机合成试剂 ● 环境分析试剂 ● 精密分析试剂 ● 色谱试剂 | ● 生化学用试剂 ● 基因研究用试剂 ● 免疫研究用试剂 ● 病理研究用试剂 ● 细胞培养用试剂 | ● 内毒素检测用试剂 ● 生物药生产用培养基 ● 研究用基础培养基 ● 定制服务 ● 设备和耗材 |
丰富的产品类目以及快速供应体系
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 | 致力于持续监测市场的需求并跟踪世界的研究动向。为了能够及时准确地响应客户的需求，富士胶片和光建立了以自有品牌为中心的丰富产品体系，为各界的研究和开发领域提供细致的服务与支持 。 |
高品质的试剂提供和生产体系
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 | 试剂生产工厂以东京工厂和大阪工厂为中心，发挥优质技术力量建立的高品质生产体系。爱知工厂配备齐全的培养基生产设备，可用于生产再生医疗和生物制药生产用的培养基。 |
优质的客户服务和产品信息
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 | 通过定期更新的主页网站、富士胶片和光生物微信公众号、富士胶片和光化学分析微信公众号，以及不定期的富士胶片和光生物视频号、网络研讨会和线下展会，致力于为客户提供优质的服务以及不断更新的产品信息。 |
强化全球化事业的开展
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 | 建立日本海外销售体系，通过提供富士胶片和光纯药（FUJIFILM Wako）优质研发力量生产的高品质产品，积极推进全球化业务。 |
企业历史沿革
年份 | 内容 |
1922年6月 | 从武田長兵衞商店（现武田薬品工業株式会社）的化学药品部门独立出来，成立了武田化学薬品 株式会社 |
1940年 | 大阪工厂竣工 |
1944年 | 東京工厂竣工 |
1947年 | 更名为和光純薬工業株式会社 |
1950年 | 展开化成品业务 |
1952年 | 总部迁移至大阪 |
1960年 | 展开临床检测药业务 |
1968年 | 播磨工厂竣工 |
1972年 | 公司总部竣工 |
1974年 | 成立德国和光純薬有限会社（今・FUJIFILM Wako Chemicals Europe GmbH） |
1981年 | 成立美国和光純薬株式会社（今・FUJIFILM Wako Chemicals U.S.A Corporation） |
1989年 | 建设东部配送中心 |
1991年 | 建设西部配送中心 |
2004年 | 愛知工厂竣工 |
2012年 | 成立和光純耀（上海）化学有限公司（今・富士胶片和光纯药（上海）化学有限公司） |
2015年 | 收购株式会社シバヤギ（今・群馬办事处） |
2017年 | 成为FUJIFILM Corporation的全资子公司 |
2018年 | 更名为富士胶片和光纯药株式会社 |
2019年 | 合并IS Japan Co.,Ltd.（今・户田办事处） |
2022年 | 成立100周年 |
生物化学试剂、仪器和耗材
| 供货周期 | 一个月以上 | 应用领域 | 化工,生物产业,制药/生物制药 |
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ScreenFect A+
DNA & siRNA 转染试剂
通过点击化学开发的新型脂质体！！
ScreenFect ™A plus（也称作ScreenFect ™A+）是通过点击化学（Click Chemistry）筛选※1出的新型阳离子脂质体组成的转染试剂，适用于各种真核生物来源的细胞，也可直接添加至含有抗生素或者血清的培养基中。
使用 ScreenFect ™A plus转染试剂可将DNA和siRNA导入通用实验细胞系（HeLa、HepG2、MDCK等）、干细胞（小鼠ES细胞等）、血细胞（巨噬细胞、THP-1、RAW264.7等）、小胶质细胞、原代细胞（原代培养）和昆虫细胞中。其细胞毒性低，因此转染后无需更换培养基。另外，试剂成分中不含有任何有毒有害物质。
※1 Biomaterials. 2012 Nov; 33(32):8160-6. 2012
特点
● DNA和ScreenFect ™A plus试剂混合比例可选范围更广
● 使用一步法缩短分析时间至1天
● 可高效转染难以导入的细胞
● 成本低
ScreenFect ™A plus 转染性能
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※ MCF-7：人乳腺癌来源细胞（上皮细胞样形态）（贴壁系）
※ 导入方法：A公司新产品 → 2步法，ScreenFect ™A plus → 1步法
改善难以导入的细胞的转染效率！ |
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※ MDCK：狗肾小管上皮细胞来源（贴壁系）
※ 导入方法：A公司新产品 → 2步法，ScreenFect ™A plus → 1步法
改善难以导入的细胞的转染效率！ |
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※ K562：人慢性髓性细胞白血病细胞来源（悬浮系）
※ 导入方法：A公司新产品 → 2步法，ScreenFect ™A plus → 1步法
改善难以导入的细胞的转染效率！ |
◆应用数据
1. 向LNCaP细胞（贴壁系）中导入YFP融合基因的实验
进行向LNCaP细胞（贴壁系）中导入YFP融合基因的实验，在荧光显微镜下比较导入基因的表达效率。
使用ScreenFect ™A plus和增强剂SFA P-reagent，可以观察到与其他公司产品相同或更高的表达效率。
※ 数据刊登于BioWindow No144 (2016年6月号)
LNCap (人前列腺癌) 中的性能比较
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〔接种细胞数〕3×105 cells/well 〔质粒DNA量〕1 µg/assay 〔转染试剂混合比例〕 pDNA量 (µg) : ScreenFect ™A plus reagent (µL) = 1 : 3 〔孔板〕24孔板 | 〔接种细胞数〕1.5×105 cells/well 〔质粒DNA量〕1 µg/assay 〔转染试剂混合比例〕 pDNA量 (µg) : ScreenFect ™A plus reagent (µL) = 1 : 3 〔孔板〕24孔板 |
2. 向HeLa细胞（贴壁系）中导入EGFP_mRNA的实验
进行向HeLa细胞（贴壁系）中导入EGFP_mRNA的实验，在荧光显微镜下比较EGFP的表达效率。
使用ScreenFect ™A plus和增强剂SFA P试剂（产品编号：191-18331、197-18333），可以观察到与其他公司产品相同或更高的表达效率。
※ 数据刊登于BioWindow No144 (2016年6月号)
HeLa细胞中的mRNA转染性能比较
〔接种细胞数〕0.7 x 105 cells/well
〔mRNA量〕0.1 µg/assay
〔转染试剂混合比例〕mRNA量 (µg) : ScreenFect ™ A plus 试剂(µL) = 1 : 4
〔检测时间〕转染后48 h
〔曝光时间〕2 s
3. 向hiPSC（201B7株）中导入GFP融合基因的实验
进行将hiPSC（201B7株) 通过反向转染（1-STEP)导入GFP融合基因的实验，在荧光显微镜以及流式细胞仪下比较导入基因的表达效率。
使用反向转染法转染hiPS细胞的效果优异，在StemSure® hPSC培养基Δ和mTeSR™ 1两个培养基中，ScreenFect ™A plus表现出与其他公司产品相同或更高的导入效率。
※ 数据刊登于BioWindow No144 (2016年6月号)
hiPSC（201B7株)中的性能比较
1-step 使用StemSure® hPSC培养基Δ | |
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ScreenFect™A plus的转染条件 〔细胞数〕5×105 cells/well 〔质粒DNA量〕4 µg/assay 〔转染试剂混合比例〕 pDNA量 (µg) : ScreenFect ™A plus reagent (µL) = 1 : 0.5 〔孔板〕12孔板 〔备注〕SFA plus reagent以及pDNA使用了Opti-MEM® 进行稀释。 | 其他公司产品的转染条件 〔细胞数〕5×105 cells/well 〔质粒DNA量〕2 µg/assay 〔转染试剂混合比例〕 pDNA量 (µg) : ScreenFect ™A plus reagent (µL) = 1 : 2 〔孔板〕12孔板 |
1-step 使用mTeSR™1培养基 | |
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ScreenFect™A plus和其他公司产品的转染条件 〔细胞数〕5×105 cells/well 〔质粒DNA量〕1 µg/assay 〔转染试剂混合比例〕 pDNA量 (µg) : ScreenFect ™A plus reagent (µL) = 1 : 2 〔孔板〕12孔板 〔备注〕SFA plus reagent以及pDNA使用了Opti-MEM® 进行稀释。 | |
4. 向HeLa细胞（贴壁系）中导入PIK3CB siRNA的实验
使用反向转染（1-STEP）法以及正向转染（2-STEP）法进行向HeLa细胞中导入PIK3CB siRNA的实验，通过实时定量PCR测量PIK3CB mRNA的表达水平。
在定量结果的基础上与其他公司产品比较敲降效率，结果显示ScreenFect ™A plus表现出与其他公司产品相同或更高的敲降效率。
※ 数据刊登于BioWindow No149 (2017年3月号)
HeLa细胞中的性能比较
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〔接种细胞数〕1×105 cells/well 〔siRNA〕5 pmol/assay 〔转染试剂混合比例〕ScreenFect ™A plus reagent = 0.5～1.5 µL 其他公司产品 = 1.5 μL 〔孔板〕24孔板 〔检测时间〕48 h后进行确认 | 〔接种细胞数〕0.5×105 cells/well 〔siRNA〕5 pmol/assay 〔转染试剂混合比例〕ScreenFect ™A plus reagent = 0.5～1.5 µL 其他公司产品 = 1.5 μL 〔孔板〕24孔板 〔检测时间〕48 h后进行确认 |
◆使用方法、拥有使用实绩的细胞
1-Step与2-Step 操作比较
产品 | ScreenFect™A plus | A公司新产品(+reagent) | A公司的新产品 |
各条件 | 1-Step | 2-Step | |
实验方案天数 | 2 Days | 3 Days | |
DNA量 | 少 | 多 | |
是否需要调整细胞数 | 可随时调整 | 取决于预培养条件 | |
是否需要胰-蛋白酶处理 | 转染时 | 预培养时 | |
基于HTS细胞检测的可操作性 | +++++ | + | |
是否需要更换培养基 | 取决于细胞 | ||
ScreenFect ™A plus一步法概要
1步法 → 从转染到本分析的时间可缩短24 h！
ScreenFect ™A plus 转染条件
DNA转染
DNA 转染 (/well) | |||||
孔板类型 | 表面积 | 培养基体积 | SF-DNA 复合物的总体积 | DNA /稀释buffer | 转染试剂 /稀释buffer |
96 wells | 0.3 cm2 | 100 µL | 10 µL | 50 ng/5 μL | 0.15 or 0.2 μL/5 μL |
24 wells | 2 cm2 | 500 µL | 50 µL | 250 ng/25 μL | 0.75 or 1.0 μL/25 μL |
12 wells | 4 cm2 | 1,000 µL | 100 µL | 500 ng/50 μL | 1.5 or 2.0 μL/50 μL |
6 wells | 10 cm2 | 2,000 µL | 250 µL | 1,250 ng/125 μL | 3.75 or 5.0 μL/125 μL |
注：进行大规模转染时，请在转染前准备多个微管，之后再进行转染。
例：10 cm培养皿转染相当于 → 5~6个样品（6孔板）
▼ ScreenFect ™A plus 推荐实验方案
产品随附的说明书中提供了简易的实验方案，请确认“相关资料”中的文件。
ScreenFect™A plus推荐使用1步转染法。在试剂方面，为保证充分的转染效率，推荐质粒DNA与转染试剂的混合比例为1 : 3~1 : 4。另外，如希望进一步抑制转染时的细胞毒性，请使用60~80%汇合度的细胞。
siRNA转染
siRNA 转染 (/well) | |||||
孔板类型 | 表面积 | 培养基体积 | SF-siRNA 复合物的总体积 | siRNA /稀释buffer | 转染试剂 /稀释buffer |
96 wells | 0.3 cm2 | 100 µL | 10 µL | 1 pmol/5 µL | 0.1～0.3 µL/5 µL |
24 wells | 2 cm2 | 500 µL | 50 µL | 5 pmol/25 µL | 0.5～1.5 µL/25 µL |
12 wells | 4 cm2 | 1,000 µL | 100 µL | 10 pmol/50 µL | 1.0～3 µL/50 µL |
6 wells | 10 cm2 | 2,000 µL | 250 µL | 25 pmol/125 µL | 2.5～7.5 µL/125 µL |
注：虽然ScreenFect ™A plus也可以用于siRNA转染，但更推荐使用ScreenFect ™ siRNA 进行siRNA转染。
拥有ScreenFect ™A & A plus 应用实例的细胞
更多详细资料请联系富士胶片和光。
No. | 细胞名称 | No. | 细胞名称 | No. | 细胞名称 | No. | 细胞名称 |
1 | 143BTK | 22 | GP2-293 | 43 | LLC-MK2 | 64 | OLHNI-2 |
2 | 786-O | 23 | H9C2 | 44 | LO2 | 65 | Mouse overy cell |
3 | A2058 | 24 | HCT116 | 45 | LoVo | 66 | PC12 |
4 | A375 | 25 | HEK293 | 46 | MC3T3 | 67 | Plat-E |
5 | A549 | 26 | HEK293 TN | 47 | MC3T3-E1 | 68 | PLC8024 |
6 | B16 | 27 | HEK293A | 48 | MCF-10 | 69 | Primary Fibroblast |
7 | B16F10 | 28 | HEK293F | 49 | MCF-10A | 70 | RAW264.7 |
8 | Ba/F3-CH1 | 29 | HEK293FT | 50 | MCF-7 | 71 | SH-SY5Y |
9 | BEAS-2B | 30 | HEK293T | 51 | MDCK | 72 | SK-Hep1 |
10 | BEL-7402 | 31 | HeLa | 52 | MEF | 73 | SKOV3 |
11 | BT549 | 32 | HeLa S3 | 53 | mES | 74 | T98G |
12 | C2C12 | 33 | HEp-2 | 54 | mHSC | 75 | TE-13 |
13 | Cell line from killifish 来自鳉鱼的细胞系 | 34 | HepG2 | 55 | Microglia 小胶质细胞 | 76 | THP-1 |
14 | CHO-K1 | 35 | hiPSC | 56 | MLEC | 77 | U-251 MG |
15 | COS-7 | 36 | HK2 | 57 | MS-1 | 78 | U2OS |
16 | DB lymphoma DB淋巴瘤 | 37 | HKC | 58 | Myeloid dendritic cell (MDC) 骨髓树突状细胞 | 79 | U937 |
17 | DC 2.4 | 38 | HL7704 | 59 | NB1RGB | 80 | Vero |
18 | Du145 | 39 | HuH-7 | 60 | NCI-H1703 | 81 | Drosophira ovary somatic cell |
19 | EL4 | 40 | HUVEC | 61 | NE3 | 82 | HT1080 |
20 | Endothelium cell 内皮细胞 | 41 | Ins-1 | 62 | NIH 3T3 | 83 | RH7777 |
21 | EPC(carp) | 42 | L428 | 63 | NK92 | 84 | HaCaT |
富士胶片和光将实时更新ScreenFect™数据库中的使用实例，如对上述内容有疑问，欢迎随时联系进行咨询。
◆产品列表
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 |
| 293-73201 | ScreenFect™ A | 0.2 mL |
| 299-73203 | 1 mL | |
| 297-73204 | 1 mL×5 | |
| 293-75901 | ScreenFect™ mRNA | 0.2 mL |
| 299-75903 | 1 mL | |
| 299-75001 | ScreenFect™ siRNA | 0.2 mL |
| 295-75003 | 1 mL | |
| 290-80203 | ScreenFect™ UP-293 | 1 L用 |
| 294-80201 | 100 mL用 | |
| 191-18331 | SFA P-reagent | 100 μL |
| 197-18333 | 500 μL | |
| 194-18181 | ScreenFect™ Dilution Buffer | 50 mL |
【相关资料】
◆一步法和两步法实验流程的比较
产品名称 | ScreenFect ™ A plus | Ａ厂家新产品 （+试剂） | Ａ厂家产品 |
推荐的实验流程 | 一步法 | 两步法 | |
实验用时 | ２天 | ３天 | |
所需DNA量 | 低 | 高 | |
细胞数目调整 | 灵活 | 不灵活 | |
胰-酶消化 | 需要 | 需要 | |
适于高通量筛选 | +++++ | + | |
培养基的更换 | 取决于细胞系 | ||
一步法比两步法节省24小时！
高性价比的高性能基因导入试剂
ScreenFect ™ 通信
基因导入人 iPS 细胞实验数据
介绍使用 ScreenFect ™A plus 将基因导入人iPS细胞的实验结果和操作步骤。本文记载了作为 iPS 细胞支架使用的 Matrigel 孔板包被方法、配制含有 Y-27632 的细胞悬浮液的操作步骤以及推荐的试剂比例，供您参考。
◆导入人iPS细胞（201B7株）的转染操作实例
在这里，我们将介绍一些使用 StemSure® hPSC 培养基Δ（产品编号：197-17571）的操作实例。该操作步骤的完整版和使用 mTeSR1 培养基的操作步骤，请与富士胶片和光联系获取。
<转染试剂的配制>
将 2.0 μL 的 ScreenFect ™ A plus reagent、4.0 μg 的质粒 DNA 加入到 160 μL 的 Opti-MEM 中制成 DNA-lipid complex。
< Matrigel 包被孔板>
1. ４°C下溶解 Matrigel hESC-Qualified Matrix 。为防止发生凝固，请避免在室温下溶解。
2. 用 25 mL 冷却的 D-MEM/Ham's F-12 稀释 300μL 的 Matrigel。
3. 稀释后的 Matrigel 溶液按照 1 mL/well 加入到 12 孔板中。
4. 在室温下孵育１小时以上。
<细胞悬液的配制>
1. 将 StemSure® hPSC 培养基Δ在 2-8℃ 下放置数小时或过夜缓慢融解。不要在 37° C下解冻，并在一周内使用。
2. 将 bFGF（产品编号：064-05381,068-05384）按照终浓度 35-100ng/mL 添加到融解后的 StemSure® hPSC 培养基△中，配制成完-全培养基（以下称为 sshPSC 培养基）。
3. 使用前将 sshPSC 培养基恢复至室温。不要使用温水浴。
4. 将 Y-27632 按照终浓度 10 μmol/L 添加到 sshPSC 培养基中（以下称为 ROCKi+培养基）。
5. 去除 hiPS 细胞培养孔板中的培养基，用 PBS（-）清洗细胞一次。
*请在细胞汇片达到80％且处于对数增殖期时进行细胞转染。
6. 除去 PBS（-），添加 Stempro Accutase。
7. 在 37°C，5％CO2 培养箱中静置５分钟。
8. 用 1 mL 微量移液枪添加 ROCKi+培养基，将细胞从培养板上分离并吹散成单细胞。
9. 转移至 15 mL离心管中。
10. 室温下 1000 rpm（约170×g）离心３分钟。
11. 去除上清，用ROCKi+培养基重悬细胞。
12. 计算活细胞的数量。
13. 用 ROCKi+培养基将细胞浓度调整至 5×105 cells/mL。
<转染>
添加 1 mL 配制好的 DNA-lipid complex 到细胞悬液中，使用移液器充分混匀，并接种在 12 孔板中。
※要点
接种 24 小时后请更换培养基。此时的培养基不需要含有 Y-27632。
◆实验数据
通过反向转染（1-STEP）将 GFP 融合基因导入 hiPS 细胞（201B7株），并通过荧光显微镜比较基因的导入效率。
<StemSure® hPSC 培养基Δ的使用>
细胞数：5×105 cells/well
质粒 DNA 量：4 μg/assay
转染试剂混合比例：DNA 量（μg）：ScreenFect ™ A plus reagent (μL)=1 : 0.5
容器：12 孔板
备注：用 Opti-MEM 稀释 ScreenFect ™ A plus reagent 和 DNA。
细胞数：5 x 105 cells/well
质粒 DNA 量：1 μg/assay
转染试剂混合比例：DNA数量（μg）：ScreenFect ™ A plus reagent (μL)=1 : 2
容器：12 孔板
备注：用 Opti-MEM 稀释 ScreenFect ™ A plus reagent 和 DNA。
◆使用上的注意
● 建议在单细胞状态下进行人iPS细胞的基因导入。
● 建议基因导入时的细胞数约为 5×105 cells/well。
● 当质粒 DNA 量多时，导入基因的表达量高会引起细胞死亡。
【请联系富士胶片和光获取PDF】
◆Q＆A
Q1. 基因导入效率低怎么办？
A1. 通过优化DNA量和试剂用量可提高效率。另有优化Protocol（日语版/英语版），可联系富士胶片和光获取。此外，使用ScreenFect™和SFA P-reagent（产
A1. 品编号：191-18331）也可提高基因导入效率。
Q2. 如何提高表达效率？
A2. 使用ScreenFect™和SFA P-reagent（产品编号：191-18331）可提高表达水平。
Q3. 转染试剂对细胞毒性强怎么办？
A3. 使用ScreenFect™和SFA P-reagent（产品编号：191-18331）可降低细胞毒性。
Q4. 从哪些条件实验开始比较好？
A4. 可参考各ScreenFect™产品的快速Protocol（日语版/英语版），请联系富士胶片和光获取。
Q5. 转染过程是否需要更换培养基？
A5. 更换培养基不是必须的，但在添加转染试剂前更换新鲜的培养基可提高基因导入效率，改善细胞状态。
Q6. 培养基中能否含有血清和抗生素？
A6. 根据细胞类型、DNA导入量等因素，可能需要更换培养基，以适时控制培养基含或不含血清/抗生素。请根据实验用途进行讨论。
Q7. 1-Step、2-Step是什么？
A7. 1-Step是一种反向转染方法，即转染前通过在细胞分离状态下添加试剂来导入基因。
A7. 2-Step是一种正向转染法，即提前一天进行细胞的预培养，然后在细胞上添加转染试剂后导入基因。
Q8. 能否同时导入多个基因？
A8. 可以。请准备多种耐药性基因，推荐使用pEBMulti 和 pCAG。
Q9. ScreenFect ™A和ScreenFect ™A plus分别适用于哪种情况？
A9. 通常情况下推荐使用基因导入效率高的ScreenFect ™A plus。但如果其对细胞毒性强或与ScreenFect™A plus相比无性能差异时，推荐使用细胞
A1. 毒性低且价格实惠的ScreenFect ™A。
Q10. 需要转染siRNA时，推荐使用哪种ScreenFect ™？
A10. 可使用ScreenFect ™ siRNA。视情况，ScreenFect ™A plus也能有效转染siRNA。使用ScreenFect ™siRNA无法达到预期结果时，可考虑
A11. 两种试剂一同使用。
Q11. 需要转染mRNA时，推荐使用哪种ScreenFect ™？
A11. 可使用ScreenFect ™mRNA。与SFA P-reagent一同使用时，可有效转染mRNA，提高表达水平。
A11. 此外，ScreenFect ™A plus和SFA P-reagent共同使用的最适场景因细胞而异，部分情况下两者共同使用能达到优良效果。单独使用
A11. ScreenFect ™mRNA无法达到预期结果时，可考虑上述两种试剂一同使用。
Q12. SFA P-reagent是什么？
A12. 将质粒DNA或mRNA导入各种细胞时，SFA P-reagent和ScreenFect ™一同使用可提高细胞导入率和转染分子的表达水平。此外，已确认添加
A11. SFA P-reagent还能显著降低转染试剂的细胞毒性。
Q13. 有在哪些细胞中的应用实例？
A13. 已在通用细胞系（HeLa、HepG2、MDCK、MCF-7、K562 等）、干细胞、造血细胞（巨噬细胞、THP-1、RAW264.7 等）、小胶质细胞、
A11. 原代细胞、昆虫培养细胞、鱼类培养细胞及其他细胞中实现基因导入。
A11. 更多详情可查看优化Protocol（日语版/英语版），欢迎联系富士胶片和光获取。
Q14. 是否可提供试用装？
A14. 欢迎向我们联系并填写表格申请试用装。
Q15. ScreenFect ™是什么试剂？
A15. ScreenFect ™是一种由新型阳离子脂质体构成的转染试剂。
Q16. 冷冻存储会对产品性能有影响吗？
A16. 请勿使用冷冻后的产品。
Q17. 如何调整所用的质粒DNA？
A17. 推荐使用阴离子交换柱或氯化铯密度梯度离心法纯化的质粒DNA。
Q18. 血清会影响基因导入吗？
A18. 血清不会影响本产品的性能，但建议转染时避免使用EDTA 和硫酸葡聚糖等阴离子抑制剂。此外，转染时避免使用抗生素也可提高转染效率。
◆参考文献
[1] | Diefenbacher, Markus E., et al. "The LIM Domain Protein nTRIP6 Recruits the Mediator Complex to AP-1-Regulated Promoters." PLoS ONE 9.5 (2014): e97549. |
[2] | Freise, Christian, and Uwe Querfeld. "Inhibition of vascular calcification by block of intermediate conductance calcium-activated potassium channels with TRAM-34." Pharmacological Research (2014). |
[3] | Hagiwara, Akane, et al. "Luteinizing Hormone-Induced Expression of Ptger4b, a Prostaglandin E2 Receptor Indispensable for Ovulation of the Medaka Oryzias latipes, Is Regulated by a Genomic Mechanism Involving Nuclear Progestin Receptor." |
[4] | Peng, Yanyan, Ruidan Xu, and Xiaofeng Zheng. "HSCARG Negatively Regulates the Cellular Antiviral RIG-I Like Receptor Signaling Pathway by Inhibiting TRAF3 Ubiquitination via Recruiting OTUB1." PLoS pathogens 10.4 (2014): e1004041. (3) |
[5] | Wakimoto, Hiroaki, et al. "Targetable signaling pathway mutations are associated with malignant phenotype in IDH-mutant gliomas." Clinical Cancer Research (2014). (2) |
[6] | Fischer, Simon, et al. "Breaking limitations of complex culture media: Functional non-viral miRNA delivery into pharmaceutical production cell lines." Journal of biotechnology 168.4 (2013): 589-600. |
[7] | Bai, Dongmei, et al. "Regulation of the HDM2-p53 pathway by ribosomal protein L6 in response to ribosomal stress." Nucleic acids research 42.3 (2014): 1799-1811. |
[8] | Liu, Xing, et al. "Isocitrate dehydrogenase 2 mutation is a frequent event in osteosarcoma detected by a multi‐specific monoclonal antibody MsMab‐1." Cancer medicine 2.6 (2013): 803-814. |
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