一、技术简介
CLIP(Cross-linking immunoprecipitation,交联免疫共沉淀)通过结合UV交联和免疫共沉淀的方法来分析蛋白与RNA相互作用的结合位点。
二、技术原理
CLIP技术利用紫外线照射使细胞内的RNA与RNA结合蛋白(RBP)发生共价交联,随后通过免疫沉淀的方法富集与特定RBP结合的RNA片段,再经过逆转录和高通量测序等步骤,获取RBP在体内的RNA结合位点和结合序列信息。
三、应用场景
1.蛋白质-RNA相互作用研究:确定特定蛋白质在体内的RNA结合位点和结合序列,揭示蛋白质在转录后调控中的作用机制。
2.疾病相关研究:通过比较正常和疾病状态下RBP的RNA结合情况,发现与疾病发生、发展相关的RNA结合事件和调控网络。
3.药物研发:为药物研发提供新的靶点和作用机制,帮助开发针对特定RNA结合蛋白或其调控的RNA分子的药物。
4.生物信息学分析:通过对CLIP-seq数据的生物信息学分析,预测RNA结合蛋白的结合位点和结合模式,构建RNA调控网络等。
四、技术优势
1.体内原位检测:能够在活体细胞内捕获蛋白质和RNA的相互作用,真实反映体内的生理状态。
2.较高特异性和严格的纯化:通过特异性抗体或标签纯化交联复合物,可有效去除非特异性结合的RNA和蛋白质,提高结果的可信度。
3.结合高通量测序:与高通量测序技术结合,可在全基因组范围内鉴定RBP的RNA结合位点和结合序列,获取丰富的信息。
五、样本类型
新鲜细胞(贴壁细胞/悬浮细胞),紫外交联后细胞样本。
六、样本需求
细胞样本:约1×10^7个(可以是1个10cm皿,或以悬浮细胞形式存储于离心管中,或1个T75瓶);
交联细胞样本:254 nm,150 mJ/cm²标准UV交联处理细胞。
七、样本准备&运输
活细胞样本:距离较近的可以将养在皿/T75瓶/离心管内的新鲜细胞样本常温快递(最迟次日达)运输,本市内可闪送或亲自递送;
交联后细胞样本:-80℃冻存干冰运输。
八、需提供的试剂
检测用ChIP级抗体。
九、实验周期
1-2周(不包含测序)
十、其他
后续检测选择RT PCR时,需提供后续检测的位点。
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