一步法 TUNEL 细胞凋亡检测试剂盒(绿色荧光):细胞凋亡检测的精准利器
一、试剂盒的组成与工作原理
试剂盒的组成
一步法 TUNEL 细胞凋亡检测试剂盒(绿色荧光)主要包含以下几种关键组分:
TUNEL 反应混合液:包含脱氧核糖核苷酸末端转移酶(TdT)和荧光标记的脱氧核糖核苷酸(如 FITC-dUTP)。TdT 能够催化荧光标记的 dUTP 添加到 DNA 的 3'-OH 末端,从而实现对凋亡细胞 DNA 断裂的标记。
洗涤缓冲液:用于去除未结合的标记物和其他杂质,确保检测信号的特异性和准确性。
封片介质:用于封片,防止样本干燥和荧光淬灭。
工作原理
在细胞凋亡过程中,DNA 会发生双链或单链断裂,产生大量的粘性 3'-OH 末端。TUNEL 技术正是基于此原理,通过 TdT 酶将标记的 dUTP 添加到 DNA 的断裂末端。在一步法 TUNEL 检测试剂盒中,反应混合液中的 TdT 和荧光标记的 dUTP 共同作用,将绿色荧光标记物(如 FITC)连接到 DNA 的 3'-OH 末端。正常细胞或增殖细胞由于 DNA 完整性较高,几乎不产生 3'-OH 末端,因此荧光标记较少,而凋亡细胞则会因为 DNA 断裂产生大量荧光信号。通过荧光显微镜观察,可以清晰地区分出凋亡细胞和正常细胞。
二、操作使用方法
细胞或组织样本准备
细胞培养与固定:对于贴壁细胞,使用胰蛋白酶消化并收集细胞,悬浮细胞直接收集。将细胞以适量的密度接种在培养皿或盖玻片上,进行凋亡诱导处理(如药物处理、辐射等)。处理结束后,用 PBS 洗涤细胞两次,去除培养基和其他成分。加入 4% 多聚甲醛固定细胞 15 - 30 分钟。
组织切片处理:对于组织样本,将组织快速冷冻或固定后进行切片。冷冻切片厚度一般为 8 - 15 μm,石蜡切片厚度一般为 4 - 6 μm。脱蜡(石蜡切片)后,用 PBS 洗涤切片两次。
细胞通透化处理
对于某些类型的细胞或组织,可能需要进行通透化处理以增强 TUNEL 反应的效果。使用 0.1% - 0.2% Triton X-100 处理细胞或组织切片 2 - 5 分钟,以增加细胞膜的通透性,使 TdT 酶和反应底物能够更好地进入细胞核。处理后用 PBS 洗涤两次。
TUNEL 反应
反应混合液配制:按照试剂盒说明书的要求,将 TUNEL 反应混合液各组分按比例混合。一般包括 TdT 酶、FITC-dUTP 和相关缓冲液。
反应过程:将 TUNEL 反应混合液滴加在细胞或组织切片上,确保反应液覆盖整个样本。对于细胞样本,一般每孔(96 孔板)加入 50 - 100 μL 反应液;对于组织切片,根据切片大小调整反应液体积。在 37℃、湿度较高的环境中孵育 1 - 2 小时。孵育时间应根据具体实验需求和样本类型进行优化。
染色与封片
反应结束后,用洗涤缓冲液洗涤细胞或组织切片 3 次,每次 5 分钟,以去除未结合的反应混合液和其他杂质。对于需要复染的样本,可使用 DAPI 或其他核染料进行细胞核染色,按照相应染料的说明书进行操作。最后,滴加适量的封片介质,盖上盖玻片,轻压使其平整,避免产生气泡。
荧光显微镜观察与图像分析
将封片后的样本置于荧光显微镜下观察。使用合适的激发和发射滤光片组合,FITC 的激发波长一般为 488 nm,发射波长为 510 - 530 nm;DAPI(如有复染)的激发波长为 350 - 360 nm,发射波长为 450 - 460 nm。在荧光显微镜下,凋亡细胞会显示出绿色荧光(FITC 标记的 DNA 断裂处),细胞核(如用 DAPI 染色)会显示蓝色荧光。通过观察和拍照记录荧光信号,可以对细胞凋亡情况进行定性和定量分析。
三、质量控制与注意事项
质量控制
一步法 TUNEL 细胞凋亡检测试剂盒(绿色荧光)应保存在 4℃左右的低温环境中,避免光照直射和温度波动过大。在保存过程中,注意密封保存,防止试剂挥发或吸收水分。每一批次的试剂盒都经过严格的质量检测,确保其性能符合要求。
注意事项
实验环境控制:实验操作应在无菌环境下进行,避免样本受到污染。使用的试剂、培养容器和操作工具都应经过严格的灭菌处理。操作应在超净工作台中进行,以降低污染风险。
染色时间优化:TUNEL 反应时间应根据细胞类型和实验需求进行优化。过短的反应时间可能导致标记不充分,影响检测结果;过长的反应时间则可能导致非特异性标记,增加背景信号。建议在正式实验前进行小规模的预实验,以确定最佳的反应时间。
避光操作:TUNEL 反应中的荧光标记物对光敏感,操作过程中应尽量减少样本的光照时间,以防止荧光淬灭。在染色和封片过程中,应使用适当的避光措施,如使用避光罩或在暗室中操作。
细胞状态监测:实验全程观察细胞状态,确保良好生理状态,异常时及时调整条件。
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