4 壳聚糖虾青素纳米颗粒对肝纤维化小鼠肝损伤生长的抑制
4.1 实验设计的科学依据
剂量选择:参考文献中虾青素有效剂量(10-60 mg/kg/d)及壳聚糖纳米递送系统的生物利用度优化结果。
阳性对照:选用索拉非尼(5 mg/kg/d)验证壳聚糖虾青素纳米颗粒与传统化疗药物的效果差异。
检测指标关联性:
肝损伤体积/重量:直接评估抗肝损伤效果。
凋亡相关蛋白(Bax/Bcl-2):揭示诱导凋亡的分子机制。
肝组织病理学:观察肝损伤坏死及正常组织损伤程度。
4.2 技术路线
肝纤维化模型建立 → 肝损伤增殖/氧化应激 → 壳聚糖虾青素纳米颗粒干预 → 抑制增殖/诱导凋亡 + 抗氧化抗炎 → 抑制肝损伤生长、改善肝功能。
4.3 实验材料
耗材:1 mL无菌注射器、钝头灌胃针(20-22 G,3-4 cm)、无菌EP管、离心管。
试剂:壳聚糖虾青素纳米颗粒(粒径100-200 nm,Zeta电位+30 mV)、生理盐水、索拉非尼。
设备:电子天平(0.1 mg精度)、微量移液器(10-1000 μL)、小动物活体成像系统、小鼠固定器。
动物:C57BL/6J SPF级小鼠(6-8周龄)
实验周期:肝纤维化建模4周,干预治疗6周。
4.4 实验步骤
4.4.1 实验动物分组设计
分组原则:
对照全面性:涵盖正常肝组织、肝纤维化模型、干预梯度及阳性对照。
逻辑递进性:从基础对照到剂量效应,明确药物作用机制。
具体分组(每组8-10只):
4.4.2 药物配制
1. 纳米颗粒悬浮液制备步骤:
原料准备:
壳聚糖虾青素纳米颗粒冻干粉(无菌分装,避光保存于-20℃)。
生理盐水(0.9% NaCl,灭菌处理)。
母液配制:
称取冻干粉,按 10 mg/mL 浓度加入生理盐水(例:50 mg冻干粉 + 5 mL生理盐水)。
涡旋振荡:2000 rpm,持续10分钟,确保颗粒充分分散,避免聚集。
超声处理(可选):20 kHz超声探头,功率50 W,冰浴中超声3分钟(间歇脉冲,开2秒/关1秒),进一步分散纳米颗粒。
2. 工作液稀释:
根据剂量需求稀释至目标浓度(如10 mg/kg或50 mg/kg,此处的目标浓度是指按照正常成年人(60kg)所需剂量换算成小鼠的给药量),现用现配,避光保存(4℃≤24 h)。
示例: 目标剂量 10 mg/kg(小鼠体重25 g):
灌胃体积通常为 0.1 mL/10 g(即0.25 mL/25 g)。
所需浓度 = 剂量(10 mg/kg) × 体重(0.025 kg) / 灌胃体积(0.25 mL) = 1 mg/mL。
取母液(10 mg/mL)与生理盐水按 1:9 比例稀释(如1 mL母液 + 9 mL盐水);
50 mg/kg(此处的目标浓度是指按照正常成年人(60kg)所需剂量换算成小鼠的给药量)所需浓度同上。
3. 质量控制:
粒径<200 nm,Zeta电位>+30 mV,无菌过滤(0.22 μm)。
4. 保存:
现配现用,避光4℃保存≤24 h。
防聚集:充分涡旋/超声,避免静置。
稳定性:pH 5.5-6.0(可加0.1%醋酸)。
毒性控制:测试空白载体,浓度<2%。
4.4.3 灌胃操作关键步骤:
1.灌胃前准备:
禁食4小时(不禁水),减少胃内容物干扰。
使用钝头灌胃针(直径1.5 mm),灌胃体积以0.1 mL/10 g体重为依据,每天固定时间持续灌胃,阳性药是根据正常成年人日口服推荐量和小鼠体重进行等量换算。
2.固定与进针:
抓取小鼠颈背部,头部后仰30°,沿口腔右侧缓慢插入灌胃针(深度3-3.5 cm)。
遇阻力时退出调整角度,避免刺伤食道(见以下图示)。
3.推注与观察:
匀速推注(0.05 mL/s),观察小鼠无呛咳后退出针头。
记录灌胃时间、剂量及不良反应(如腹泻、呼吸困难)。
4.4.4 C57肝纤维化检测指标
1. 组织病理
染色:Masson(胶原蓝染)、天狼星红(胶原定量)
评分:Ishak或METAVIR系统
标志物:α-SMA(活化的星状细胞)
2. 血清指标
损伤:ALT、AST
纤维化:HA(透明质酸)、PCIII(III型前胶原肽)
3. 分子检测
基因:Col1a1、TGF-β1(qPCR)
蛋白:Collagen I、α-SMA(Western Blot)
4. 功能指标
羟脯氨酸:定量肝胶原含量(金标准)
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