细胞计数仪操作方法

 
实验步骤和方法：
 
I部分：样品制备
 
选项1：用3%乙酸和亚-CH3蓝对总有核细胞计数进行细胞稀释
 
使用磷酸盐缓冲盐水或无血清培养基对充分混合的单细胞悬浮液进行适当稀释。为了准确表示浓度，请使用至少20μL的细胞悬浮液进行稀释。
 
示例：制备10倍稀释液
 
在微量离心管或96孔板的孔中加入180μL的3%乙酸和亚-CH3蓝。混合细胞悬浮液，将20μL添加到含有3%乙酸和亚-CH3蓝的试管或孔中。
 
选项2：通过台盼蓝染料排除对活细胞计数进行细胞稀释
 
确保要计数的细胞悬浮液*重新悬浮。在细胞沉降之前，将适量的细胞悬液(20-200μL)放入离心管中。加入等体积的0.4%台盼蓝并轻轻混合。将混合物在室温(15°C–25°C)下孵育5分钟。
 
II部分：使用血细胞计数器进行细胞计数
 
通过用70%C2H6O清洁腔室表面来制备血细胞计数器。擦干。将盖玻片放在腔室上。
 
使用20μL移液器重新悬浮细胞混合物，并将10μL的染色细胞放入血细胞计室。
 
注意：小心不要移动盖玻片。允许毛细作用将样品吸入。
 
将血细胞计数器放在双目光学显微镜的载物台上。将显微镜调整到10倍放大倍率并聚焦在细胞上。
 
使用手动计数计数器，计算血细胞计数器四个外部正方形中的每一个中的细胞（染色的细胞核）（图1A），包括位于底部和左侧周边的细胞，但不包括位于顶部和右手边（图1B）。如果在第一部分中使用了3%乙酸和亚-CH3蓝，则计算染色的细胞核。如果在第一部分中使用了台盼蓝，则计算未染色的活细胞。