COSMOSIL Cholester色谱柱_反相色谱柱-广州绿百草科学仪器有限公司

COSMOSIL Cholester色谱柱返回列表页

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具体成交价以合同协议为准

产品型号:

品牌:COSMOSIL/科思美析

厂商性质:代理商

所在地:广州市

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更新时间：2023-11-08 14:32:20浏览次数：496次

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供货周期	现货	应用领域	综合

产品描述

COSMOSIL Cholester色谱柱是反相体系的HPLC柱，胆甾醇键合硅胶填料，具有和传统的烷基键合C18、C30硅胶填料一样的疏水性，但是在相同的分析条件下，Cholester对疏水化合物的立体选择性好。

Cholester与C18柱具有相同的疏水性。因此使用Cholester代替C18柱或C30柱时，不需要改变分析条件。与传统的C18柱相比，Cholester具有更强的选择性和分离同分异构体或结构类似物的能力，它可以很好的代替传统C18色谱柱。

· 胆甾醇基固定相

· 使用条件与C18柱相同

· 提高了立体选择性和几何异构体的分离度

· 适用于天然物的分离

<strong>COSMOSIL Cholester色谱柱</strong>

规格

色谱柱	5μm Cholester
内径(mm)	2.0	3.0	4.6	10		20		28
柱长(mm)	ALL	ALL	ALL	20-150	250	20-100	150-250	ALL
出厂溶剂	乙腈 / 水 = 60 / 40	甲醇 / 水 = 70 / 30			甲醇 / 水 = 80/ 20	甲醇 / 水 = 70 / 30	甲醇 / 水 = 80/ 20
冲洗方法	去除色谱柱内的缓冲液，盐，酸的方法：使用不含缓冲液，盐，酸的流动相冲洗10-15分钟。例：流动相为甲醇/磷酸缓冲液（20mmol/L） =50/50时，就使用甲醇/水 =50/50冲洗冲洗色谱柱内附着物的方法，基线不稳时的解决方法样本不是蛋白质时，使用甲醇或四氢呋喃冲洗。样品是蛋白质时，使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水冲洗
保存方法	短期（数日）保存：使用不含缓冲液，盐，酸的流动相冲洗10-15分钟。保存。例：流动相为甲醇/磷酸缓冲液（20mmol/L） =50/50时，就使用甲醇/水 =50/50冲洗长期（1个月以上）保存：使用后，先用不含酸和盐的流动相清洗色谱柱，再将流动相置换为乙腈/水=70/30或甲醇/水=70/30，保存。
pH范围	pH2～pH7.5
最大耐压	20MPa			15MPa
温度范围	最高可耐60度，建议在20~50度下进行分析。
可使用的溶剂	除碱溶液和强酸溶液（pH1.5以下）以外都可以使用。（强碱溶液会使硅胶溶化，强酸溶液会使固定相脱落）注意点：溶剂粘度过高会导致压力上升，请将压力控制在20Mpa以下。使用酸性流动相或凝固点高的溶剂后，必须清洗色谱柱。
注意事项	一般情况下缓冲液浓度为0.005~0.02 mol/L即可。流动相在使用前一定要通过0.5μm以下的滤膜过滤。蛋白质反相模式分析时，请使用大孔径色谱柱（孔隙直径300Å) COSMOSIL Protein - R（粒径5μm）。

色谱柱	2.5μm Cholester
内径(mm)	2.0	3.0
柱长(mm)	ALL	ALL
出厂溶剂	乙腈 / 水 = 50 / 50
冲洗方法	去除色谱柱内的缓冲液，盐，酸的方法：使用不含缓冲液，盐，酸的流动相冲洗10-15分钟。例：流动相为甲醇/磷酸缓冲液（20mmol/L） =50/50时，就使用甲醇/水 =50/50冲洗冲洗色谱柱内附着物的方法，基线不稳时的解决方法样本不是蛋白质时，使用甲醇或四氢呋喃冲洗。样品是蛋白质时，使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水冲洗
保存方法	短期（数日）保存：使用不含缓冲液，盐，酸的流动相冲洗10-15分钟。保存。例：流动相为甲醇/磷酸缓冲液（20mmol/L） =50/50时，就使用甲醇/水 =50/50冲洗长期（1个月以上）保存：使用后，先用不含酸和盐的流动相清洗色谱柱，再将流动相置换为乙腈/水=70/30或甲醇/水=70/30，保存。