微量法：过氧化物酶（POD）测试盒 活性检测

规格：100T/96S

产品内容：微量法：过氧化物酶（POD）测试盒 活性检测

提取液：液体 100mL×1 瓶，4℃保存；

试剂一：液体 20mL×1 瓶，4℃保存；

试剂二：液体 0.2mL×1 瓶，4℃保存；用时加入 3mL 试剂一，现配现用，可 4℃保存一周；

试剂三：液体 3 mL×1 瓶，4℃保存。

需自备的仪器和用品：

可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、可调式移液器、微量玻璃比色皿/96 孔板、研钵、冰和蒸馏水

操作步骤：

一、粗酶液提取：

1、细菌、细胞或组织样品的制备

收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照每 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液，超声波破碎细菌或细胞（功率 20％，超声 3s，间隔 10s，重复 30 次）；8000g 4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。

称取约 0.1g 组织，加入 1mL 提取液进行冰浴匀浆；8000g 4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。

2、血清（浆）样品：直接检测。二、测定步骤：

1、 分光光度计或酶标仪预热 30min 以上，调节波长至 470nm，蒸馏水调零。

2、 测定前将试剂一、二和三在 37℃（哺乳动物）或 25℃（其它物种）放置 10min 以上。

3、 样本测定表

在 EP 管中按顺序加入上述试剂，立即混匀并计时，立即取 200µL 转移至微量玻璃比色皿或 96

孔板中，记录 470nm 下 30s 时的吸光值 A1 和 1min30s 后的吸光值 A2。计算∆A＝A2-A1。

POD 活性计算：

用微量玻璃比色皿测定的计算公式如下

1、按血清（浆）体积计算

单位定义：每 mL 血清（浆）在每 mL 反应体系中每分钟 A470 变化 0.01 定义为一个酶活力单位。POD（U/mL）＝∆A÷0.01×V 反总÷V 样÷T =4900×∆A

2、按样本蛋白浓度计算

单位定义：每 mg 组织蛋白在每 mL 反应体系中每分钟 A470 变化 0.01 定义为一个酶活力单位。POD（U/mg prot）＝∆A÷0.01×V 反总÷（Cpr×V 样）÷T =4900×∆A÷Cpr

3、按样本鲜重计算

单位定义：每 g 组织在每 mL 反应体系中每分钟 A470 变化 0.01 定义为一个酶活力单位。POD（U/g 鲜重）＝∆A÷0.01×V 反总÷（W÷V 样总×V 样）÷T =4900×∆A÷W

4、按细菌或细胞数量计算

单位定义:每 1 万个细菌或细胞在每 mL 反应体系中每分钟 A470 变化 0.01 定义为一个酶活力单位。POD（U/104 cell）＝∆A÷0.01×V 反总÷（500÷V 样总×V 样）÷T =9.8×∆A

用 96 孔板测定的计算公式如下

1、按血清（浆）体积计算

单位定义：每 mL 血清（浆）在每 mL 反应体系中每分钟 A470 变化 0.005 定义为一个酶活力单位。POD（U/mL）＝∆A÷0.005×V 反总÷V 样÷T =9800×∆A

2、按样本蛋白浓度计算

单位定义：每 mg 组织蛋白在每 mL 反应体系中每分钟 A470 变化 0.005 定义为一个酶活力单位。POD（U/mg prot）＝∆A÷0.005×V 反总÷（Cpr×V 样）÷T =9800×∆A÷Cpr

3、按样本鲜重计算

单位定义：每 g 组织在每 mL 反应体系中每分钟 A470 变化 0.005 定义为一个酶活力单位。POD（U/g 鲜重）＝∆A÷0.005×V 反总÷（W÷V 样总×V 样）÷T =9800×∆A÷W

4、按细菌或细胞数量计算

单位定义：每 1 万个细菌或细胞在每mL 反应体系中每分钟A470 变化 0.005 定义为一个酶活力单位。POD（U/104 cell）＝∆A÷0.005×V 反总÷（500÷V 样总×V 样）÷T =19.6×∆A

V 反总：反应体系总体积，0.245mL；V 样：加入样本体积，0.005mL；V 样总：加入提取液体积，1 mL；T：反应时间，1 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本鲜重，g；500：细菌或细胞总数，500 万。

微量法：过氧化物酶（POD）测试盒 活性检测注意事项：

1、 如一次测定的样本数量较多，可将试剂一、二、三和蒸馏水按照比例混合，在 37℃（哺乳动物） 或 25℃（其它物种）放置 10min，测定时加入 240µL 即可。

2、 样本测定值如果小于 0.005，可将反应时间延长到 3-5 分钟，计算时除以反应时间即可；如果高于 0.5，可将样本用提取液进行稀释。计算时乘以相应的稀释倍数即可。