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动物炎症模型

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动物炎症模型

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伊莱博生物科技(上海)有限公司,公司总部位于上海长江软件园。2024年1月与上海大学医学院成立联合研究中心,主要以生命科学研究为基础,专注于研究成果转化及技术服务创新,建立了包含肿瘤生物学、病理学、免疫学、细胞生物学、生物化学与分子生物学以及动物实验等学科的研究服务体系,为医学领域的发展做出了重要贡献。


目前已建成并投入使用的实验室面积近2800平方米,包含基础实验平台、组学实验平台以及动物实验平台,基本能够满足科研课题研究的全流程。


伊莱博生物拥有专业的技术支持和实验操作人员团队,核心成员来自中科院、复旦、交大、同济等国内重点高校及科研机构,能够提供前沿的、完善的实验技术咨询与服务。


为了响应国家大力发展基础研究的号召,推动实验科学领域的进步,伊莱博生物充分利用积累多年的科研资源优势,为广大科研工作者提供实验技术培训服务,从理论和实操两个部分,培养其科研思维以及解决问题的能力,为今后的科研工作奠定坚实的基础。








免疫学;ELISA试剂盒,抗体,生化试剂,相关试剂。原代细胞,传代细胞,及培养试剂

动物炎症模型构建


一、动物炎症模型背景介绍

炎症,即人们常说的“发炎”,是机体对于刺激的一种防御反应,通常表现为红、肿、热、痛和功能障碍。炎症可以是感染引起的感染性炎症,也可以不是由于感染引起的非感染性炎症。在炎症过程中,损伤因子直接或间接造成组织和细胞的破坏,但机体也会通过炎症充血和渗出反应,以稀释、杀伤和包围损伤因子。同时,通过实质和间质细胞的再生使受损的组织得以修复和愈合。因此,可以说炎症是损伤和抗损伤的统一过程

 

二、动物炎症模型介绍

2.1、急性炎症模型:

例如通过注射致炎物质(如酵母多糖、角叉菜胶等)到动物体内,诱导急性炎症反应,观察组织肿胀、白细胞浸润等变化。

2.2、慢性炎症模型:

例如通过长时间给予低剂量致炎物质或遗传改造,诱导慢性炎症反应,研究慢性炎症的病理生理过程。

2.3、特定疾病模型:

如炎症性肠病(IBD)模型,常使用化学试剂(如三硝基苯磺酸、葡聚糖硫酸钠等)诱导小鼠或大鼠产生结肠炎症状,模拟人类IBD的病理过程

2.4、自身免疫性疾病模型:

自身免疫性疾病,如类风湿性关节炎(RA),可以通过构建动物模型来研究其发病机制和治疗策略。例如,佐剂性关节炎(AIA)模型是常用的RA动物模型之一,通过注射wanquan弗氏佐剂或不wanquan弗氏佐剂诱导关节炎症。

2.5、全身炎症模型:

为了模仿人类的全身炎症反应,已经研制出多种动物模型,如内毒素脂多糖(LPS)给药模型、外源性病原体接种模型以及内源性保护屏障破坏模型(如盲肠结扎穿孔模型)等

三、动物炎症模型的构建

     3.1、实验耗材

           小鼠、大鼠等

     3.2、常见的炎症模型构建流程

1.  炎症性疼痛模型

通过向小鼠一侧后爪足趾部位注射wanquan弗氏佐剂(CFA)  溶液,在皮下形成皮丘,模拟炎症性疼痛。

2.  炎症性肠病模型

虽然搜索结果中没有直接提及具体的建模方法,但提到了选择软管和硬管的不同对建模的影响,暗示了建模过程中细节的重要性。

3.  急性肺炎模型

通过气管注射肺炎链球菌P4241菌株来构建小鼠急性肺炎模型,用于评估抗生素疗效。

4.  急性溃疡性结肠炎模型

使用DSS(葡聚糖硫酸钠)通过口服或灌胃的方式诱导小鼠急性溃疡性结肠炎,用于研究肠道炎症。

5.  乳腺炎模型

通过注射jinhuangseputaoqiujun或使用噬菌体vBSM-A1与vBSP-A2来诱导小鼠乳腺炎,用于研究乳腺炎症。

6.  支气管炎模型

‌        通过吸入刺激性气体或颗粒物,如烟雾暴露,来诱导支气管炎。

7.  种植体周炎模型

‌        通过棉线结扎、局部注射牙龈卟啉单胞菌脂多糖(LPS)或两者联合使用来诱导大鼠种植体周炎,用于研究牙周病的发病机制

 

四、模型验证

1、行为学测试:

von Frey单丝测试

哈格里夫斯测试

缩足舔爪时间

2、组织病理学检查

通过HE染色、TUNEL染色等方法观察注射部位的组织病理变化,如炎症细胞浸润、组织损伤、细胞凋亡等

3、生化指标检测:

检测动物体内与炎症和疼痛相关的生化指标,如炎症介质(如TNF-α、IL-1β等)、神经递质(如guansuan、5-羟色胺等)的水平变化,这些指标的变化可以反映模型的炎症和疼痛程度。

4、药物干预实验:

使用已知具有抗炎或镇痛作用的药物对模型动物进行干预,观察其是否能有效缓解炎症和疼痛。如果药物干预能够显著改善动物的炎症和疼痛症状,则进一步验证了模型的可靠性

五、小结

炎症模型虽然为研究提供了有力的工具,但每种模型都有其局限性。因此,在解释实验结果时,需要综合考虑模型的特点和实验条件,并结合临床实际情况进行综合分析。



六、文献


    [1] 马宝育,张振江,张蕊,刘婕,赵永军,神经细胞炎症模型的构建:小胶质细胞-神经元共培养系统,中华麻醉学杂志,2022,4,416-420, R741,R-332

    [2] 陈浩,李蕊,易菲,周丽,陈嘉琪等,小鼠小肠类器官炎症模型的构建, 天津医药,2024,1,16-21, R574.5

    [3] 田敏,胡俊,杨国华,谢明水,黄宏耀,单核细胞的原代分离方法优化及其炎症激活模型的构建,生物资源,2020,2,221-227,R34

    [4] Fatme Seval Ismail,Franco Corvace ,Pedro M Faustmann ,Timo Jendrik Faustmann,Pharmacological Investigations in Glia Culture Model of Inflammation,FrontCellNeurosci.2021,Dec,16:15:805755.doi:10.3389/fncel.2021.805755.

    [5] Dhanesh Amarnani,Angie V Sanchez, Lindsay L Wong,Brandon V Duffy 2, Leslie Ramos,Suzanne K Freitag,Diane R Bielenberg,Leo A Kim,Nahyoung Grace Lee, Characterization of a Murine Model of Oxazolone-Induced Orbital Inflammation, Transl Vis Sci Technol.2020 Jul 16;9(8):26. doi: 10.1167/tvst.9.8.26.





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