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细胞培养

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上海昆盟生物科技有限公司(COWELDGEN SCIENTIFIC)是一家专注于生命科学领域提供相关试剂产品和服务的生物高科技企业,坐落于上海聚科生物产业园。公司主要提供种类齐全的细胞系和多种原代细胞、质量稳定的细胞培养试剂以及检测试剂产品、成熟高效的技术服务。本着“守正创新,科学严谨”的理念,我们以高标准塑造行业品牌,以全新的视野构建现代企业,勇于探索和创新。公司业务范围涉及全国各省市自治区,目前已与国内多家医院、高校、科研院所、生物科技公司建立了良好的合作关系,赢得了良好的市场声誉和广泛的认可,我们保证将继续为广大科研用户提供专业、高效、优质的产品及服务!





细胞产品,分子试剂,细胞检测试剂盒,技术服务

应用领域 医疗卫生,生物产业 规格 根据细胞种类和培养要求,详询技术!

一、产品介绍

细胞培养也叫细胞克隆技术,在生物学中的正规名词为细胞培养技术。通过细胞培养得到大量的细胞或其代谢产物。细胞的生长需要营养环境,用于维持细胞生长的营养基质称为培养基。培养基按其物理状态可分为液体培养基和固体培养基。

细胞培养是指从动物活体体内取出组织,于模拟体内生理环境等特定的体内条件下,进行孵育培养,使之生存并生长。细胞培养现已广泛应用于生物学、医学、新药研发等各个领域。

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二、过程介绍

细胞培养过程中,涉及到多个基本实验操作,例如:复苏、换液、传代、冻存等。

复苏

1.把冻存管从液氮中取出来,立即投入37℃水浴锅中,轻微摇动(注意防止盖子不紧致使液体进入冻存管)。液体都融化后(大概1-1.5分钟),拿出来喷点酒精放到超净工作台里。

2.把上述细胞悬液吸到装10ml培养基的15ml的离心管中(用培养基把冻存管洗一遍,把粘在壁上的细胞都洗下来),1000转离心5分钟。

3.把上清液倒掉,加1ml培养基把细胞悬浮起来。吸到装有10ml培养基的10cm培养皿中前后左右轻轻摇动,使培养皿中的细胞均匀分布。

4.标好细胞种类和日期、培养人名字等,放到37℃的5%CO2培养箱中培养。

5.根据细胞增长速度2-3天换一次培养基。



换液(以贴壁细胞为例)

1.培养一段时间后,细胞还未长满,而细胞培养基颜色由红色逐渐变黄,说明培养基中营养物质不足,需要及时换液。

2.吸掉原有培养基。

3.加入等体积新的*培养基。

4.放到37℃的5%CO2培养箱中继续培养。

5.培养过程中,要定期观察细胞状态。如果细胞密度达到80%-90%需要准备传代。


传代(以贴壁细胞为例)

1.培养皿中的细胞覆盖率达到80%-90%时要传代。

2.把原有培养基吸掉。

3.加适当的胰蛋白酶(能覆盖细胞就行),消化1-2分钟。

4.细胞都变圆后加入等体积的含血清的培养基终止消化。

5.用移液枪吹打细胞,让细胞悬浮起来。

6.把细胞吸到10ml或15ml的离心管中,1000转离心5分钟。

7.倒掉上清液,加1-2ml培养基,把细胞都吹起来。

8.根据细胞种类把细胞传到几个培养皿中,一般1: 2~3传代。


冻存

把细胞消化下来并离心(同上)。用配好的冻存液把细胞悬浮起来,分装到灭菌的冻存管中,静止几分钟,写明细胞种类,冻存日期。4℃ 30min,-20℃ 30min,-80℃ 过夜,然后放到液氮灌中保存。

冻存液的配制:80%的*培养基+10�S+10%DMSO。注意:DMSO要慢慢滴加,边滴边摇。


三、根据细胞生长的恃点,需要选择不同方法进行细胞传代

◆ 贴壁生长的细胞用消化法传代;

◆ 部分贴壁生长(半悬浮生长)的细胞用直接吹打可传代;

◆ 悬浮生长的细胞可以采用直接吹打或离心分离后传代,或用自然沉降法吸除上清后,再吹打传代。

1.  贴壁细胞的消化法传代:

1)先吸除或倒掉瓶内旧培养液。

2)D-Hanks液洗2~3次。

3)向瓶内加入适量消化液(胰蛋白酶或与EDTA混合液)轻轻摇动培养瓶,使消化液流遍所有细胞表面。(注意:胰蛋白酶要预温,温度37℃左右为宜。)

4)消化最好在37℃环境下进行,消化2~5 min 后把培养瓶放置显微镜下进行观察,发现胞质回缩,细胞间隙增大后,应立即终止消化。

5)吸除或倒掉消化液,如用EDTA消化,需加Hanks液数毫升,轻轻转动培养瓶把残留消化液冲掉,再添加培养液。如仅用胰蛋白酶可直接加少许含血清的培养液,终止消化。

6)用弯头吸管,吸取瓶内培养液,反复吹打瓶壁细胞。从培养瓶底部一边开始到另一边结束,以确保所有底部都被吹到,使细胞脱离瓶壁后形成细胞悬液。吹打时动作要轻柔,不要用力过猛。

7) 细胞计数后分别接种在新的培养瓶内。

8)置于37℃细胞培养箱培养。(注意:要定时观察细胞,如发现污染,应及时处理。)


2.  悬浮细胞的传代:悬浮细胞传代可离心收集细胞后传代,或直接传代。

离心传代法:

1) 将细胞连同培养液一并转移到15 ml 离心管内。

2) 800~1000 rpm离心5 min。(注意:离心转速要合适。转速过低,不能有效分离细胞;离心速度过大,时间过长,会挤压细胞造成损伤甚至死亡。)

3) 弃去上清,加新的培养液到离心管内,用吸管吹打形成细胞悬液。

4) 计数,分别接种在新的培养瓶内。

直接传代法:让悬浮细胞慢慢沉淀在瓶底后,将上清液吸掉1/2~2/3,然后用吸管吹打形成细胞悬液后再传代。


3.  部分贴壁细胞的传代

1)部分贴壁不牢的细胞,如Hela细胞等,不经消化处理直接吹打可使细胞从壁上脱落下来,而进行传代。

2)对绝大部分贴壁生长的细胞,因直接吹打对细胞损伤较大,细胞常有较大数量的丢失,因而需消化后,才能吹打传代。


四、细胞培养优缺点

优点:

1)能长期传代,保持活性,便于监控检测结构功能和生命活动。

2)培养条件可以人为的控制便于研究细胞代谢、物理、化学、生物因素的影响

3)可用于各种观察和检测手段研究活细胞的变化(变异、分化)。可从细胞水平开展亚细胞结构和代谢分子的表达。

4)研究范围和细胞来源广泛,选择性广。

5)不同代次细胞可长期保存,既可开展同代次不同条件和方法研究,又可观察不同代次的动态变化。

6)耗资少、经济、成本低、可大量培养,利于生物制品的生产。

缺点:

细胞或组织生长在人工环境中,与体内环境存在差异,细胞或组织的形态或功能会发生不同程度的改变。

 



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