MAVEn™高通量16通道果蝇代谢监测系统
- 公司名称 北京易科泰生态技术有限公司
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- 厂商性质 代理商
- 更新时间 2020/4/7 9:38:58
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北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年，为中关村高新技术企业，致力于生态-农业-健康研究监测技术推广、研发与服务，特别是在光谱成像技术（高光谱成像技术、叶绿素荧光成像技术、红外热成像技术、无人机遥感等）、植物表型分析技术、呼吸与能量代谢测量技术等方面，与专业企业PSI、Specim、Sable等合作，致力于植物科学、土壤与地球科学、动物能量代谢、水体与藻类及生态环境领域先进仪器技术的引进推广和技术研发集成，为植物/作物表型分析、生态修复及生态保护、能量代谢测量等提供规划设计、技术方案与系统集成、技术咨询与科技服务。公司技术团队80％以上具备硕士或硕士以上学位，并与*研究生院、中科院植物研究所、中科院动物所、中科院地理科学与资源研究所、中国农科院、中国林科院、中国环科院、中国水科院、清华大学、中国农业大学、北京林业大学、北京大学、中国海洋大学、陕西师范大学、内蒙古大学等建立了长期的技术合作交流关系。
公司下设有叶绿素荧光技术与植物表型业务部、EcoTech®实验室、光谱成像与无人机遥感事业部及无人机遥感研究中心（与陕西师范大学合作建立）、动物能量代谢实验室、内蒙古阿拉善蒙古牛生态牧业研究院及青岛分公司。实验室拥有叶绿素荧光成像、叶绿素荧光仪、水体藻类荧光仪、SPECIM高光谱仪、WORKSWELL红外热成像仪、EasyChem全自动化学分析仪、MicroMac1000水质在线监测系统、ACE土壤呼吸自动监测系统、SoilBox便携式土壤气体通量测量系统、动物呼吸测量系统、LCpro 光合作用测量仪、Hood土壤入渗仪、年轮分析仪等各种仪器设备，可以进行实验研究分析、实验培训等，欢迎与易科泰生态研究室开展合作研究。
易科泰公司与欧洲PSI公司（叶绿素荧光技术与表型分析技术）、美国SABLE公司（动物能量代谢技术）、欧洲SPECIM公司（高光谱成像技术）、欧洲WORKSWELL公司（红外热成像技术）、欧洲ATOMTRACE公司（LIBS元素分析技术）、欧洲BCN无人机遥感中心、欧洲ITRAX公司（样芯密度扫描与元素分析）、美国VERIS公司、英国ADC公司、德国UGT公司、欧洲SYSTEA公司等著名生态仪器技术领域的研发机构和厂商建立了密切的合作关系，在FluorCam叶绿素荧光成像与荧光测量技术、PlantScreen植物表型分析技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、光合作用与植物生理生态研究监测、土壤呼吸与碳通量研究监测、动物呼吸代谢测量、水质分析与藻类研究监测、CoreScanner样芯密度CT与元素分析技术、LIBS元素分析技术、无人机生态遥感技术等生态仪器技术及其系统方案集成有着丰富的经验，成为我国农业、林业、地球科学、生态环境研究等领域科技进步的重要研究技术支持力量。由公司研制生产的EcoDrone®无人机遥感平台、SoilTron®多功能小型蒸渗仪技术、SoilBox®土壤呼吸测量技术、PhenoPlot®轻便型作物表型分析系统、SCG-N土壤剖面CO2／O2梯度监测系统、植物生理生态监测技术、动物能量代谢测量技术等，在中科院修购项目、*学科群项目、CERN网络（生态系统监测网络）等项目中发挥重要作用。
“工欲善其事，必先利其器”，易科泰公司将秉承“利其器，善其事”的经营理念，为国内生态-农业-健康研究与发展提供优秀的技术方案和服务。
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土壤与植物生理生态研究监测、环境气象监测、水文水质及地下水监测、水土保持研究监测、荒漠化监测、精准农业以及动物生态研究等仪器技术的引进推广和系统集成,并为生态环境实验研究和规划设计提供技术方案和分析测量。
| 产地类别 | 进口 | 价格区间 | 5千-1万 |
|---|---|---|---|
| 应用领域 | 医疗卫生,环保,化工,生物产业,农业 |
MAVEn™高通量16通道果蝇代谢监测系统
果蝇作为经济实用的模式动物，可用于中枢神经系统紊乱、炎症性病变、心血管疾病、癌症以及糖尿病等治疗研究，而这些疾病的发生从生理上来说都与生物个体长期的代谢功能异常密切相关。
MAVEn™高通量16通道果蝇代谢监测系统是由世界的美国Sable Systems International动物代谢测量公司生产的一款16通道、高分辨率及自动化的果蝇代谢监测仪器，可广泛用于代谢紊乱造成的各种流行疾病治疗的机理研究。
MAVEn™果蝇代谢系统作为果蝇代谢分型监测方面应用很广泛的产品，主要具备以下特点：
1. 改变了传统的单只果蝇的封闭或半封闭式测量模式，实现每个测量室都有
实时气流通过的*开放式测量，避免了测量时内出现缺氧（hypoxia）
或高碳酸血症（hypercapnia），可一次测量多达16只个体。
2. 15秒就可以完成一只果蝇的代谢监测，这代表了目前技术能达到的极限。
3. 数据可以通过SD卡把带时间标签的CSV格式直接导出到电脑。
4. 可选配FLIC果蝇觅食、AD-2果蝇活动、气体（氧气、二氧化碳、水汽以
及其它可检测气体）等监测单元。
5. 参考文献多，高达4万多篇，属于前沿科技。
具体性能指标：
1. 气流流速：5毫升/分钟-200毫升/分钟，质量流量计，PID精确控制，精度
为2%。
2. 昆虫测量时间：15秒-3小时可程序化选择；基线测量时间：15秒-3小时可
程序化选择。
3. 气压测量：分辨率1Pa,精度0.05%。
4. 光照水平：0.1-5000勒克斯。
5. 温度测量：0-50℃，分辨率0.01℃，精度±0.25℃。
6. 模拟输入：6个模拟输入，16bit分辨率，-5至+5伏电压信号，可接SSI其
它仪器或实验室其它气体分析仪等。
7. 数据格式：CSV格式；数据存储：SD卡，大支持32G的SD卡。
8. 双通道高精度差分式氧气分析测量仪：测量技术：燃料电池原理氧传感
器，双通道；氧气浓度量程0-100%（用户可自定义设置5个级别）；差值
量程±50%；精度0.1%（O2浓度2-100%时）；分辨率0.0001%O2；漂移<
0.01%每小时（温度恒定情况下）；响应时间小于7秒；24小时漂移<0.01%
；20分钟噪音<3ppm RMS；数字过滤（噪音）0-40秒可调，增幅0.2秒，
内置A/D转换器分辨率16bits；温度、压力补偿；传感器温度测量范围0-60
℃，精度0.2℃，分辨率0.001℃；大气压测量分辨率0.0001kPa，精度为
满量程的0.05%；适用流量范围5-2000mL/min；4通道模拟信号输出（0-5V
BNC）可输出通道1的氧气浓度，通道2的氧气浓度，1和2的差值，大气压；
数字输出：RS-232；具4行文字LCD显示屏，带背光，可同时显示2个通道
的氧气含量和它们的差值，以及大气压；*PID（Proportional-
Integral-Derivative）温控单元，保证内部氧气传感器温度恒定，进一
步提高了氧气测量的精度和稳定性；供电12-24VDC，8A，配交流电适配器
；工作温度：5-45℃，无冷凝；重量6.4kg；尺寸43.2cm×35.6cm×20.3cm
9. 超高精度二氧化碳分析测量仪：用于测量微小昆虫（比如果蝇、蚊子
等）或蜱螨类微小动物的呼吸代谢，可同时测量CO2浓度和H2O浓度；
CO2量程0-3000ppm；准确度<1%；分辨率0.01ppm；H2O量程0-60mmol
/mol；准确度1%；
10. 二次抽样单元：内置气泵、精密针阀、质量流量计，可用来给气流样本
做二次抽样，也可单独作为气源使用；流量范围5-2000mL/min；精度为
读数的10%；分辨率1mL/min；具备2行显示LCD显示屏；带0-5V BNC模拟
信号输出；数字输出RS-232；供电12-15VDC，20-350mA，配交流电适配
器；工作温度：0-50℃，无冷凝；重量1.5kg；尺寸16cm×13cm×20cm；
产地：美国
文献案例：
在2016年已发表的果蝇有关文献中，使用SSI果蝇代谢监测系统的达14篇，2015年11篇，截止目前相关文献共计500多篇。
1. Andrew N R, Ghaedi B, Groenewald B. The role of nest surface temperatures and the brain in influencing ant metabolic rates[J]. Journal of Thermal Biology, 2016, 60: 132-139.
2. Baaren J, Dufour C M S, Pierre J S, et al. Evolution of life‐history traits and mating strategy in males: a case study on two populations of a Drosophila parasitoid[J]. Biological Journal of the Linnean Society, 2016, 117(2): 231-240.
3. Bartholomew N R, Burdett J M, VandenBrooks J M, et al. Impaired climbing and flight behaviour in Drosophila melanogaster following carbon dioxide anaesthesia[J]. Scientific reports, 2015, 5.
4. Basson C H, Clusella-Trullas S. The behavior-physiology nexus: behavioral and physiological compensation are relied on to different extents between seasons[J]. Physiological and Biochemical Zoology, 2015, 88(4): 384-394.
5. Bosco G, Clamer M, Messulam E, et al. EFFECTS OF OXYGEN CONCENTRATION AND PRESSURE ON Drosophila melanogaster: OXIDATIVE STRESS, MITOCHONDRIAL ACTIVITY, AND SURVIVORSHIP[J]. Archives of insect biochemistry and physiology, 2015, 88(4): 222-234.
6. Casas J, Body M, Gutzwiller F, et al. Increasing metabolic rate despite declining body weight in an adult parasitoid wasp[J]. Journal of insect physiology, 2015, 79: 27-35.
7. Correa Y D C G, Faroni L R A, Haddi K, et al. Locomotory and physiological responses induced by clove and cinnamon essential oils in the maize weevil Sitophilus zeamais[J]. Pesticide biochemistry and physiology, 2015, 125: 31-37.
8. DeVries Z C, Kells S A, Appel A G. Estimating the critical thermal maximum (CT max) of bed bugs, Cimex lectularius: Comparing thermolimit respirometry with traditional visual methods[J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 2016, 197: 52-57.
9. Dreiss A N, Séchaud R, Béziers P, et al. Social huddling and physiological thermoregulation are related to melanism in the nocturnal barn owl[J]. Oecologia, 2016, 180(2): 371-381.
10. Duun Rohde P, Krag K, Loeschcke V, et al. A Quantitative Genomic Approach for Analysis of Fitness and Stress Related Traits in a Drosophila melanogaster Model Population[J]. International Journal of Genomics, 2016, 2016.
11. Fischer K E, Gelfond J A L, Soto V Y, et al. Health effects of long-term rapamycin treatment: the impact on mouse health of enteric rapamycin treatment from four months of age throughout life[J]. PloS one, 2015, 10(5): e0126644.
12. Groom D J E, Toledo M C B, Welch K C. Wingbeat kinematics and energetics during weightlifting in hovering hummingbirds across an elevational gradient[J]. Journal of Comparative Physiology B, 2016: 1-18.
13. Gudowska A, Boardman L, Terblanche J S. The closed spiracle phase of discontinuous gas exchange predicts diving duration in the grasshopper, Paracinema tricolor[J]. Journal of Experimental Biology, 2016: jeb. 135129.
14. Haddi K, Mendes M V, Barcellos M S, et al. Sexual Success after Stress? Imidacloprid-Induced Hormesis in Males of the Neotropical Stink Bug Euschistus heros[J]. PloS one, 2016, 11(6): e0156616.
15. Haddi K, Oliveira E E, Faroni L R A, et al. Sublethal exposure to clove and cinnamon essential oils induces hormetic-like responses and disturbs behavioral and respiratory responses in Sitophilus zeamais (Coleoptera: Curculionidae)[J]. Journal of economic entomology, 2015: tov255.
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