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FluorPen手持式叶绿素荧光仪（固定透明叶夹）

FluorPen手持式叶绿素荧光仪（固定透明叶夹）采用调试式荧光测量技术，可设置多种参数，方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧，方便携带，设计新颖，操作简单，经济耐用，精度高稳定性好。FluorPen手持式叶绿素荧光仪（固定透明叶夹）自带暗适应叶夹，容易操作。

FluorPen手持式叶绿素荧光仪（固定透明叶夹）应用领域

 适用于光合作用研究和教学，植物及分子生物学研究，农业、林业，生物技术领域等。研究内容涉及光合活性、胁迫响应、农药药效测试、突变等。

• 植物光合特性和代谢紊乱筛选
• 生物和非生物胁迫的检测
• 植物抗胁迫能力或者易感性研究
• 代谢混乱研究
• 长势与产量评估
• 植物——微生物交互作用研究
• 植物——原生动物交互作用研究

FluorPen手持式叶绿素荧光仪（固定透明叶夹）典型样品

• 植物叶片
• 其它

FluorPen手持式叶绿素荧光仪（固定透明叶夹）工作原理

利用调制式荧光测量技术，采用LED光源，选择仪器内置的给光方案测量并计算叶绿素荧光的各种参数。

FluorPen手持式叶绿素荧光仪（固定透明叶夹）功能特点：实验过程和测量参数

• Ft：瞬时叶绿素荧光、暗适应完成后Ft＝Fo
• QY：光量子效率，表示光系统II 的效率，等于Fv/Fm(暗适应完成的样品)或Fv’/Fm’ (光适应完成的样品)
• OJIP：叶绿素荧光瞬时OJIP曲线是反应光合作用过程中植物生理时间过程的重要信号。
• NPQ：非光化学淬灭，表示光合作用中叶绿素吸收光能后以热形式散失掉的部分。
• 光曲线：Qy对不同光强的适应曲线。
• PAR测量：可在荧光仪上显示PAR值，可计算20次检测值的平均。
• 另外还具有GPS定位功能

FluorPen手持式叶绿素荧光仪（固定透明叶夹）技术参数

• 测量参数：Fo, Ft, Fm, Fm′,QY， OJIP, NPQ 1,2 和光曲线1,2,3。
• 测量光：蓝光（可选红光或白光）
• 光化学光和饱和光：0–3000μmol (photons).m-2.s-1可调
• 波长检测范围：697nm-750nm
• BOIS：可升级
• 

通讯：USB接口

• 存储：4M
• 数据存储：100,000个
• 显示：2 x 8字符黑白液晶屏
• 键盘：密封防水设计2键
• 自动关机：5分钟无操作
• 电源：4 AAA碱性电池或充电电池
• 电池寿命：持续测量70 h
• 低电报警
• 尺寸：120 x 57 x 30 mm; 4.7" x 2.2" x 1.2"
• 重量：180 g, 6.5 oz
• 操作条件：温度：0 ～ 55 oC；相对湿度：0 ～ 95 %非冷凝
• 存储条件：温度：-10 to +60 oC；相对湿度：0 ～ 95 %非冷凝
• 软件：FluorPen2.0, Windows 2000,XP或更高*，实时显示和遥控，植入GPS绘图，EXCEL输出
• PAR传感器：读数单位μmol(photons)/m2.s，可显示读数，检测范围400-700 nm

FluorPen手持式叶绿素荧光仪（固定透明叶夹）操作软件与实验结果

FluorPen手持式叶绿素荧光仪（固定透明叶夹）配置型号指南：

标准配置——FP100max-D + GPS模块 + PAR传感器：功能完备

简化配置——FP100max-D：无PAR数据+ 无GPS数据

产地: 欧洲

参考文献

Harding S.A., Jarvie M.M., Lindroth R.L. and Tsai Ch-J. (2009): A comparative analysis of phenylpropanoid metabolism, N utilization, and carbon partitioning in fast- and slow-growing Populus hybrid clones. J. Exp. Botany, Vol. 60 (12), pp. 3443-3452.

Klem K. and Bajerova E. (2008): Adjustment of herbicide dose in sugar beet based on non-invasive chlorophyll fluorescence measurements. AgEng 2008 Conference, Hersonissos, Crete.

附：参数列表

Bckg = background

Fo: = F50μs; fluorescence intensity at 50 μs

Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

Fm: = maximal fluorescence intensity

Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

Fm / Fo = Fm / Fo

Fv / Fo = Fv / Fo

Fv / Fm = Fv / Fm

Mo = TRo / RC - ETo / RC

Area = area between fluorescence curve and Fm

Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

Phi_o = I - Vj

Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

TRo / RC = Mo . (I / Vj)

ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)